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己烯雌酚(DES)是一种典型的人工合成非甾体类雌激素, 是环境水体中常被检出的内分泌干扰物之一[1 − 2]. 由于对胎儿生殖器官的致畸作用和可能导致肿瘤[3],己烯雌酚已被禁止用于孕期妇女,但是在临床中仍是治疗雌激素分泌不足所导致的妇科疾病及乳腺癌的药物之一[4]. 随着生活及养殖废水的排放,己烯雌酚最终会进入环境水体,并可能污染饮用水水源. 例如,在我国某些饮用水水源或环境水体中,仍可以检出一定浓度(≤ 2.52 ng·L−1)的己烯雌酚[2,5]. 己烯雌酚常用的检测方法有气相色谱-质谱法、液相色谱-质谱法、酶联免疫吸附法(ELISA)等[6]. 但这些方法或需要利用价格高昂的仪器,对试验人员的专业技术手段要求较高,或耗时较长,无法用于对己烯雌酚的现场快速检测.
胶体金免疫层析检测试纸由于具有简单、快速、易于解读的优势而在临床检测[7]、动物疫病[8]、食品安全[9]、环境监测[10]等领域得到广泛应用,是一种适用于现场快速检测的技术. 该技术的原理是基于目标物与由胶体金标记的抗体或抗原相互作用,在固定有用于捕获抗体或抗原的反应区和控制区,通过目视或使用读取装置读取测试结果[11]. 利用胶体金免疫层析试纸获取目标物含量信息的方式主要有以下三种. 最常见的一种方式是根据检测线(T线)出现与否判断目标物是否超过一定浓度. 在环境检测或食品安全检测中常用来判定目标物含量是否超标,是一种定性检测方式;第二种类型,检测线上包被的反应物设计成只能结合一定量的分析物,过量的分析物会与下一条检测线结合,产生一个条带梯度[12];第三种是用特定仪器读取检测卡显色情况,并将显色情况转换为数字信号达到定量的目的[13].
研究发现[14],利用传统方法制备的己烯雌酚胶体金免疫层析检测卡受温度、湿度影响很大,不适于野外现场检测. 为克服这一问题,我们在金标垫上增加偶联IgY的胶体金做为第二金标物,在NC膜上包被3种不同浓度的羊抗IgY作为参考线,在检测反应中这3条参考线的颜色分别对应3个DES的浓度,通过检测线与3条参考线的颜色对比实现对样品中的DES残留所处浓度区间的确定. 这种体系使得检测线反应和参考线反应处于相同的反应条件,使其很大程度不受环境干扰,通过半定量参考线与检测线的结合,实现了不依赖检测仪器的己烯雌酚可视化检测. 本文研究并验证了基于半定量参考线方法对水中己烯雌酚残留进行现场检测的可行性.
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己烯雌酚单克隆抗体、DES-BSA购于广东优抗多生物技术有限公司,羊抗鼠抗体、牛血清白蛋白(BSA)购自杭州索莱尔博奥生物技术有限公司,鸡免疫球蛋白IgY、羊抗IgY购自洛阳佰奥通实验材料中心,己烯雌酚、Tween-20购自Merck公司(德国),氯金酸购自于国药集团化学试剂有限公司. 硝酸纤维素膜(VIVID170)购自美国PALL公司. 玻璃纤维膜、PVC底板、吸水纸购于上海金标生物科技有限公司. 己烯雌酚ELISA检测试剂盒购自北京普赞生物技术有限公司.
喷金划膜仪购自上海捷宁生物技术有限公司,可编程切条机(HGS201)购于杭州峰航科技有限公司.
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胶体金的制备参考Sun等报道的方法[15]. 主要步骤如下:将2 mL氯金酸溶液(1%,W/V)加入到100 mL超纯水中,加热使溶液沸腾. 然后,在不断搅拌下加入1.3 mL柠檬酸钠溶液(2%,W/V). 待溶液颜色变为酒红色后,继续保持沸腾10 min. 然后,停止搅拌及加热,待溶液冷却至室温后加入超纯水将溶液体积补足至100 mL. 4 ℃冰箱中储存待用. 制备的胶体金平均粒径为30 nm. 分别将DES单克隆抗体和IgY标记在胶体金上,方法简述如下:用0.1 mol·L−1的K2CO3将胶体金溶液调节至最适pH值,加入计算好的最适稳定量的蛋白质,轻摇混匀1 min,静置30 min. 用10% BSA溶液(pH7.2)封闭30 min后,将离心管于4 ℃、
12000 r·min−1离心30 min;弃去上清液. 用 1% BSA(pH7.2)溶液洗涤沉淀,于4 ℃、12000 r·min−1离心30 min;弃去上清液. 加入100 μL胶体金复溶液(10 mmol·L−1磷酸盐缓冲液、pH 7.2、含1% BSA、10%蔗糖、5%海藻糖、0.05%叠氮钠)复溶沉淀. -
用喷金划膜仪以3 μL·cm−1的速度,将上一步制备的标记了DES单抗的胶体金结合物溶液喷到玻璃纤维素膜上,37 °C烘干24 h,制成DES金标结合物垫. 用喷金划膜仪,以0.8 μL·cm−1的速度,将一系列不同浓度的DES-BSA溶液(0.2、0.4、0.6、0.8 mg·mL−1)和羊抗鼠IgG溶液(0.5 mg·mL−1)划在NC膜上,37 °C烘干24 h;将玻璃纤维膜在样品垫处理液(20 mmol·L−1磷酸盐缓冲液,pH7.2,含1% Tween-20,1% BSA)中浸泡5s,取出后,37 °C烘干24 h,制成样品垫. 按照图1a所示组装己烯雌酚试纸条,分别将80 μL浓度为0、10、20、40 ng·mL−1 的DES溶液滴加到试纸条的样品垫上,反应5min后,目视观察,并利用ImageJ对试纸条的T线和C线灰度值进行分析. 以T线对不同浓度DES的显色区分度选择最适DES-BSA包被浓度.
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用喷金划膜仪以3 μL·cm−1的速度,将上一步制备的标记了IgY的胶体金结合物溶液喷到玻璃纤维素膜上,37 °C烘干24 h,制成IgY金标结合物垫. 用喷金划膜仪,以0.8 μL·cm−1的速度,将优化浓度的DES-BSA溶液划到NC膜T线位置. 将不同浓度羊抗IgY溶液(0.1、0.2、0.3、0.4 mg·mL−1)划在NC膜C线位置,37 °C烘干24 h;然后按照样品垫、DES金标垫、IgY金标垫、NC膜、吸水纸的顺序组装检测试纸,考察试纸对浓度为0、5、10、20、40 ng·mL−1 DES溶液的响应,目视观察,分别考察在DES浓度为5、10、20 ng·mL−1时T线与C线显色相近的羊抗IgY包被浓度. 如图1b所示,将选出的3个浓度的羊抗IgY按浓度由低到高顺序,依次包被到NC膜上,制备图1b所示检测试纸,并用ImageJ分析试纸对不同上述浓度DES的显色情况,根据分析结果对参考线浓度进行微调,直到阴性条件下该区间中3条半定量参考线中最深显色不超过T线显色,并且3条半定量参考线由低到高分别与5、10、20 ng·mL−1时T线显色相近.
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将样品垫、金标垫、硝酸纤维素膜和吸水纸依次贴在底板上,彼此间以搭接方式连接(如图1),用切条机切成4 mm宽试纸条,装入塑料卡壳,加干燥剂密封保存.
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为研究温度对试纸条检测结果的影响,在实验室用空调将实验室温度分别调节至16、25 °C,实验期间室内湿度为30%—35%. 在恒温恒湿箱中将温度调为35 °C、湿度35%. 将试纸放在上述环境中平衡30 min后,考察其对不同浓度DES的响应.
为研究湿度对试纸条检测结果的影响,分别将试纸条放在实验室内(温度25 °C、湿度30%—35%)以及恒温恒湿箱中(温度25 °C、湿度55%)平衡及反应,考察其对不同浓度DES的响应.
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在山东省王屋水库黄水河入库口、水库中心、大坝位置取3个水样,经0.45 μm滤膜过滤后,分别用本文制备的检测卡及市售的己烯雌酚酶联免疫试剂盒检测水样中己烯雌酚的含量. 在不含己烯雌酚的水样中添加5、10、20 ng·mL−1的己烯雌酚,分别用本文制备的检测卡及己烯雌酚ELISA试剂盒检测,比较二者的检测结果.
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首先对DES单克隆抗体在胶体金上的标记浓度进行了优化. 由图2a可见,当DES单克隆抗体的标记浓度为5 μg·mL−1胶体金及以上时,向胶体金中加入饱和NaCl不会导致胶体金颜色的变化,提示5 μg·mL−1胶体金为DES抗体的稳定标记浓度. 为保证DES抗体对胶体金的充分结合,在此标记浓度基础上增加20%,即6 μg·mL−1胶体金作为DES单克隆抗体的标记浓度. 图2b是以不同浓度DES-BSA包被NC膜得到的检测试纸T线在不同浓度DES下的显色,可以看到,随DES-BSA浓度增加,T线显色呈加深的趋势. 由于DES-BSA浓度为0.6 mg·mL−1时对阴性样本显色较深(灰度值>200),且在40 ng·mL−1DES样本完全消线,所以将其作为最优DES-BSA包被浓度.
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首先用” 2.1”所述的方法优化出IgY的标金浓度为5 μg·mL−1胶体金. 然后,按照”1.4”所述方法,确定了3条定量参考线的羊抗IgY包被浓度在0.1、0.2、0.3 mg·mL−1附近,然后经进一步微调,最终确定3条定量参考线(C1、C2、C3)的羊抗IgY包被浓度依次为0.1、0.17、0.25 mg·mL−1.
在优化条件下制备的试纸条如图3a所示,目视观察可以看到,当样品中不含DES或DES含量低于5 ng·mL−1时,T线显色比三条定量参考线深,当DES浓度为5、10、20 ng·mL−1时,T线显色分别与C3、C2、C1相近,当样品中DES含量大于20 ng·mL−1时,T线显色比C1浅. 利用ImageJ软件对试纸进行分析,可以看到当DES浓度为5、10、20 ng·mL−1时,T线灰度值分别与C3、C2、C1的灰度值相近(图3b). 因此试纸条对DES残留的半定量检测区间为≤5、5—10、10—20、≥20 ng·mL−1.
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首先考察了16、25、35°C 3个温度对DES半定量试纸检测结果的影响,结果如图4所示. 由图4可见,随环境温度升高,试纸条的显色逐渐加深,尤其在16°C和25°C之间显色变化最为显著,这可能是温度影响了抗体与抗原的免疫反应速度所导致的.
考察了35%和55%两个湿度条件对DES试纸检测的影响,实验温度为25°C. 结果显示,在高湿度条件下,DES的显色显著低于低湿度条件. 图4和图5的结果说明,如果采用固定色卡与T线显色做对比来进行半定量测定会产生很大的偏差. 温度、湿度会显著影响胶体金的释放速度及在NC膜上的扩散速度,并且温度还会影响抗体与抗原的分子热运动进而影响免疫反应速度,所以不同温湿度下,胶体金免疫层析试纸上T、C线的显色速度会受到较大影响. 而由于金标DES抗体和DES-BSA反应体系以及组成“动态色卡”体系的金标IgY与羊抗IgY反应体系是在同一条检测试纸上受到相同的温湿度的影响,因此,T线和参考线的显色速度变化趋势则是基本相同的. 本实验结果证明了在检测试纸上集成“动态色卡”这种设计的可行性,它有助于消除温湿度变化对于胶体金侧向流免疫层析试纸显色结果判定的不利影响,从而提高目视检测的准确度.
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分别用本文制备的DES检测卡及市售的DES酶联免疫试剂盒(检测限为0.1 ng·mL−1)检测了山东省王屋水库采集的3个水样,均未检出己烯雌酚. 在水库中心水样中添加了己烯雌酚,使其终浓度分别为5、10、20 ng·mL−1,然后分别用本文制备的检测卡及己烯雌酚ELISA试剂盒对加标样品进行了检测,二者的检测结果如表1所示. 结果表明本研究所制备的DES检测卡对加标水样的检测结果与市售ELISA试剂盒的实测结果一致.
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本研究通过将不同浓度的羊抗IgY包被在NC膜上,与金标IgY结合,在DES检测试纸上构建了一个独立于检测线免疫反应的“动态色卡”,由于受相同温湿度的影响,色卡的半定量参考线在不同温度和湿度下的显色与DES检测线基本一致,因此可以在不同温度和湿度的环境中实现对DES的半定量检测. 制备的试纸条对DES残留的半定量检测区间为≤5 ng·mL−1;5—10 ng·mL−1,10—20 ng·mL−1,≥20 ng·mL−1,对地表水样品中DES的目视半定量检测结果与ELISA试剂盒检测结果一致. 本研究克服了传统免疫层析试纸条的检测结果易受环境温湿度等因素影响的缺点,能够在野外环境中实现对己烯雌酚的现场检测. 同时,由于组成“动态色卡”的反应体系独立于DES的反应体系,本研究所提出的“动态色卡”设计思路可以应用于其它抗原的免疫层析试纸检测,在环境监测、体外诊断、食品安全等对现场快速检测有较大需求的领域有可观的应用前景.
基于“动态比色卡”的胶体金免疫层析试纸检测地表水中己烯雌酚残留
A colloidal gold immunochromatographic test strip based on “dynamic colorimetric card” for the detection of diethylstilbestrol residues in surface water
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摘要: 胶体金免疫层析技术可以快速方便的实现目标化合物的可视化检测,因此被认为特别适合现场快速筛查. 但胶体金免疫层析试纸检测线的显色受环境温度及湿度影响显著,从而影响了现场可视化检测结果的准确性. 为减轻温度、湿度对检测结果的影响,本文以己烯雌酚(DES)单克隆抗体标记胶体金,与NC膜上包被的DES-BSA反应,作为检测线;以鸡免疫球蛋白(IgY)标记胶体金,与NC膜上以3个不同浓度包被的羊抗IgY多克隆抗体反应,作为3条半定量参考线,制备了DES半定量免疫层析检测试纸. 该试纸条对DES残留的半定量检测区间为≤5 ng·mL−1、5—10 ng·mL−1、10—20 ng·mL−1、≥ 20 ng·mL−1,在测试的温度、湿度范围内判读结果无显著变化. 对地表水样品中DES半定量检测结果与ELISA试剂盒检测结果一致. 本研究思路可望用于开发更适合现场检测需求的胶体金免疫层析检测卡.Abstract: Due to its convenient visual detection of target compounds, colloidal gold immunochromatography technology is particularly suitable for on-site rapid screening; yet, the color development of the colloidal gold immunochromatographic test strip detection line can be significantly impacted by environmental temperature and humidity, thus affecting the accuracy of the on-site visualization detection. To minimize the effects of temperature and humidity on the detection results, a diethylstilbestrol (DES) semi-quantitative immunochromatographic assay strip was prepared by labeling colloidal gold with DES monoclonal antibody and reacting with DES-BSA coated on NC membrane as the detection line; Additionally, three semi-quantitative reference lines were created by labeling colloidal gold with chicken immunoglobulin (IgY) and reacting with sheep anti IgY polyclonal antibodies coated on NC membrane at three different concentrations. This test strip is capable of semi-quantitative analysis of DES concentrations in four ranges: ≤ 5 ng·mL−1, 5—10 ng·mL−1, 10—20 ng·mL−1, and ≥ 20 ng·mL−1, with no significant discrepancies in the results within the tested temperature and humidity ranges. The semi-quantitative detection results of DES in surface water samples are in agreement with the detection results from the ELISA kit. This method is expected to be used to create colloidal gold immunochromatographic detection cards that are more suitable for on-site testing requirements.
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近年来随着我国城镇化水平的深入推进,城市下垫面不透水层比率迅速提高,加速了径流形成过程,缩短了径流汇集时间;与此同时,人类活动增加了蓄积在城市下垫面污染物的种类和数量。二者共同作用,使得由地表径流引发的城市水体污染问题日益突出[1]。生物滞留池是用于城市雨洪管理的一种低影响开发(low impact development, LID)技术,其可通过地表径流原位滞留调节峰值流量,并通过吸附、生物吸收和降解以去除地表径流中的污染物[2]。有研究表明,生物滞留池对传统目标污染物,如重金属[3]、多环芳烃[4]、总氮、总磷等均具有较好的去除效果[5-6]。
全氟化合物(perfluorinated compounds, PFCs)是一种典型的新污染物,作为表面活性剂和保护剂被广泛应用于日常用品及工业生产中。PFCs具有生物毒性和生物累积性,可在人体内蓄积造成健康危害[7]。城市下垫面累积的全氟和多氟烷基化合物(per/polyfluoroalkyl substances, PFASs)主要来源于大气PFASs及其前体物的传输和沉降[8-9],并在雨水冲刷下进入受纳水体。有研究表明,雨季河水中的PFASs浓度水平明显高于旱季[10]。因此,地表径流中的PFCs含量不可忽视,明确生物滞留池对PFCs的削减效能对城市面源污染防治和可持续发展具有十分重要的现实意义和科学价值。
传统生物滞留系统的填料层(bioretention soil media,BSM)常由土壤与细砂混合而成,具有良好的渗透性能[11]。近年来,以煤质活性炭、沸石等为主要改良剂的生物滞留池得到了广泛运用。活性炭层可明显提高脱氮效率,使氨氮(NH3-N)和总氮(TN)的平均去除率达到80.27%和59.45%[12],沸石层对多环芳烃的去除率达40%以上[13]。然而,改良填料层对PFCs的去除能力及各污染物在系统中的空间分布特征尚不清楚。为此,本研究通过构建不同填料的生物滞留系统,利用为期1 a的模拟实验考察了改良填料下生物滞留池的水量削减效能,分析了其对常规污染物和PFCs的去除效果,探讨了PFCs是否影响常规污染物去除及其长期运行能力,以期为城市雨洪综合管理提供参考。
1. 材料与方法
1.1 生物滞留池装置构建
生物滞留装置采用有机玻璃PMMA材料制成,高度1 500 mm,直径400 mm。距池顶150 mm处设溢流口,沿柱体向下每间隔150 mm设置取样口,共8个取样口,取样口均封有纱网布。设备底部预留滞留体积,接直径为25 mm出水管(图1)。滞留装置基质层填料类别不宜过多,BSM由河沙、土、树皮按质量比65:30:5比例构成[14]。JIANG等[15]设置BSM+10%绿色沸石、BSM+10%粉煤灰等6种改良生物滞留系统,其对溶解性污染物较好均有较好的去除效果。因此,本研究中1#生物滞留池填料层由BSM+10% 2~4 mm沸石(BSM+10% Zeolite)组成;2#池填料层由BSM+10% 2~4 mm煤质颗粒活性炭(BSM+10% GAC)组成。滞留装置由下至上分别是150 mm砾石排水层(粒径24 mm)、600 mm填料层和300 mm的种植层。种植层填料为场地附近红土,种有生性强健、耐阴耐湿的紫芋。种植层表面为50 mm高的覆盖层,材料为树皮。各层间由土工布隔开并预留出200 mm高蓄水层。锡纸包裹柱体种植层以下外壁,模拟无光环境,为厌氧菌提供生存条件。为防止短流,1#生物滞留池内侧用云石胶贴有砾石。
1.2 实验设计
根据ZENG等[16]的研究,采用NH4Cl、KNO3、KH2PO4、尿素、葡萄糖、7种PFCs配置人工雨水。PFCs包括全氟辛酸(perfluorooctanoic acid,PFOA)、全氟丁酸(perfluorobutanoic acid,PFBA)、全氟辛基磺酸(perfluorooctane acid,PFOS)、全氟戊酸(perfluoropentanoic acid,PFPeA)、全氟己酸(perfluorohexanoic acid,PFHxA)、全氟庚酸(perfluoroheptanoic acid,PFHpA)和全氟壬酸(perfluorononanoic acid,PFNA)。污染物分别为1.5 mg·L−1
-N、 4 mg·L−1NH+4 -N、1.2 mg·L−1 TP、10 mg·L−1 TN、300 mg·L−1 COD;30 ng·L−1 PFOA、10 ng·L−1 PFBA、10 ng·L−1 PFOS、10 ng·L−1 PFPeA、10 ng·L−1 PFHxA、10 ng·L−1 PFHpA、10 ng·L−1 PFNA。将上述各PFCs浓度定为c,每个生物滞留池按表1所示实验条件分别进行3组实验。NO−3 表 1 生物滞留装置实验条件设计Table 1. Experimental condition design (for a single bioretention column)实验条件 进水浓度 重现期/a 降雨历时/min 实验水量/L 降雨间隔/d 1 c 0.5 180 58 3 2 c 0.5 180 58 10 3 2c 0.5 180 58 20 1.3 试剂和检测方法
硝酸钾和硫酸(AR,纯度>95%)购自广州化学试剂公司;无水硫代硫酸钠(纯度>99%)购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;葡萄糖购自上海润捷化学试剂有限公司;氯化铵购自CNW公司(德国);磷酸二氢钾购自天津市科密欧化学试剂有限公司;OasisWAXSPE柱(6cc,150mg)购自Waters公司(美国)。
采用HACH DRB200消解器和DR3900分光光度计,根据《水和废水监测分析方法 (第四版) 》中的国家标准或行业标准分析方法测定:COD采用快速消解法、TN采用碱性过硫酸钾消解紫外分光光度法、TP采用钼锑抗分光光度法、
-N采用水杨酸法、NH+4 -N采用镉还原法。利用岛津TOC-L总有机碳分析仪测定TOC。采用WatersXevoTQ-S质谱仪,根据液相色谱-串联质谱法测定7种PFCs。上机前PFCs需采用固相萃取法对样品进行前处理:采集的水样经玻璃纤维滤膜(WhatmanGF/F,英国)过滤,加入50μL 0.1 mg·L−1 碳代全氟壬酸(MPFNA)内标与50 μL0.1 mg·L−1 5种混合内标。Oasis-WAX小柱由4 mL 0.1%氨水-甲醇溶液、4 mL甲醇溶液和4mL超纯水活化,水样经60 mL注射器,以约1滴·s−1的速度匀速通过Oasis-WAX小柱。上样结束后,加入4 mL乙酸铵缓冲液于注射器中进行清洗。清洗结束后,加压抽干,依次加入4 mL甲醇和4 mL 0.1%氨水-甲醇溶液洗脱,收集洗脱液至氮吹仪吹干,加入0.5 mL甲醇溶液定容并涡旋30 s,通过0.22 μm滤膜贮存至聚丙烯进样瓶中,-20 ℃保存等待上机检测。NO−3 1.4 数据处理方法
利用Masslynx软件对PFCs数据进行处理。水量削减效果使用水量削减率
进行评价,根据式(1)进行计算,水质净化效果使用污染物浓度去除率RV 评价,根据式(2)进行计算。Rc RV=Vin−Vout−VoverVin×100% (1) Rc=Cin−CoutCin×100% (2) 式中:
为径流体积削减率,%;RV 为污染物浓度去除率,%;Rc 分别为进水、出水、溢流水量,m3;Vin、Vout、Vover 分别为降雨径流进水和出水的浓度,mg·L−1。Cin、Cout 2. 结果与讨论
2.1 水量调控效果分析
生物滞留装置底部出水口出流时间和水量削减率如图2(a)所示。1#生物滞留池首次出流时间稳定,平均值为(51±9) min。2#生物滞留池平均出流时间高于1#生物滞留池且不稳定,平均值为(165±90) min;其运行初期出流时间高于后期,尤其在投入使用0.5 a后底部出流明显加快。这说明2#生物滞留池填料透水率随运行时间增加而增高,提示长期运行时需考虑煤质活性炭在雨水浸泡后的老化情况和使用年限。1#生物滞留池水量削减率为17.13%~41.48%,2#生物滞留池为15.67%~42.7%,两池的水量削减率相当。匡彬等[17]的研究表明,在P=1、2 a 等小重现期降雨条件下,绿色雨水系统对径流量和峰流量的削减效果较好。当降雨强度为1 a一遇时,径流总量削减率达到21.7%。本研究中重现期设定为0.5 a, 1#和2#生物滞留池水量削减率平均值分别为30.3%和29.4%,削减率与文献报道结果一致[18]。图2(b)为生物滞留池水量削减率随运行时间的变化情况。如图2所示,削减率随运行时间增长呈现波动下降的趋势,其中,2#生物滞留池削减率后期下降趋势更为明显。
2.2 常规污染物去除效果分析
1)常规污染物在生物滞留池中纵向迁移情况。为考查污染物在滞留池中的纵向迁移规律,获取连续3次降雨间隔为10 d的各出水口常规污染物去除率。如图3(a)~(b)所示,目标污染物的去除率随池深增加而提高,说明填料层对常规污染物去除起到关键作用。其中活性炭的比表面积、微孔体积大,有利于为基质提供更多的吸附位点;沸石表面呈粗糙多孔结构,这有利于对离子的物理吸附[19]。
1#生物滞留池由上至下对COD、TP、TOC的去除率均逐渐上升。9号出水口COD、TP、TOC的去除率为48.68%、66.71%、 77.96%。1#生物滞留池对
-N的去除率较高,保持在80%以上;但对NH+4 -N的去除率波动大,去除率多为负值,最低可达-150%。2#生物滞留池COD、TP和TOC的去除率随柱深增加而增加。9号出水口COD、TP、TOC的去除率84.62%、62.38%、 92.69%。与1#生物滞留池相近,2#生物滞留池NO−3 -N去除率在60%以上,呈W型,NH+4 -N去除率波动大且效能低。这主要是因为NO−3 -N带负电,难以吸附到填料上,加之生物滞留系统不易形成厌氧环境致使反硝化反应难以进行[20]。综上所述,两池均能有效去除COD、TOC、TP,且去除效能2#生物滞留池优于1#生物滞留池。尽管NO−3 -N去除率较高,但NH+4 -N难以被生物滞留池去除,最终导致TN去除效果不佳。NO−3 2)生物滞留池对常规污染物去除效果的长期稳定性情况。为考察生物滞留池对常规污染物的长期去除性能,系统在8个月内以不同实验条件进行了非连续地降雨实验,其中实验条件1在3—4月,条件2在5—8月,条件3在9—11月下进行。如图4(a)所示,1#生物滞留池COD去除率呈稳定并略有上升的趋势。由38.97%(3月)增长至87.69%(11月);2#生物滞留池COD去除率较1#生物滞留池波动明显,但除去2次异常低值后,COD去除率达80%以上。2#生物滞留池的2次异常低值,分别出现在第1次实验和与前次实验间隔期间较长的第7次实验,考虑为COD浸出与气候的影响。由图4(b)可见,2组生物滞留池对TN的去除效果有着不同的趋势。1#生物滞留池波动较大,去除率偏低,TN去除率由40.52%增至运行后期的95.28%。2#生物滞留池恰好相反,前期TN去除率较高,后期降低。由图4(c)可见,2组生物滞留池对
-N的去除率出现波动,NH+4 -N去除率最高为 100%,最低分别为66.67%和52.94%。该波动下降可能是因降雨实验间隔时间过长导致的。冉阳等[20]研究证明,干旱期的延长有利于去除硝酸盐氮,但对氨氮的去除有阻碍作用。在6种目标常规污染物中,2组生物滞留池对NH+4 -N的去除效果均不理想,且装置长期运行也未能提高NO−3 -N去除率。造成生物滞留系统NO−3 -N 去除率波动的原因可能是介质中缺少反硝化细菌生存所需要的缺氧条件,NH3-N 被消耗,而产生大量 NO3—-N,导致其去除效果不佳。由图4(d)可见,TP去除率呈小幅波动下降趋势。在雨水径流中磷的存在形态主要是颗粒态磷,主要通过填料过滤截留去除。因此,填料有效吸附位点数随运行时间增加而逐渐减少[21],最终导致TP去除率下降。综上所述,系统对COD去除效能稳定,对TP的去除效能随运行时间增长而下降,NO−3 -N去除率与降雨时间间隔有关。NH+4 2.3 全氟化合物迁移滞留情况分析
1)全氟化合物在生物滞留池中迁移规律。通过分析各出水口PFCs总量可知,1#生物滞留池在6号出水口获得最高去除率(实验条件2),池底出水口PFCs去除率反而明显下降(图5(a)~(b)),其中对PFOA的去除率尤为低下(-279%)。同样地,2#生物滞留池8号出水口达到最高,底部9号出水口PFPeA、PFHxA、PFHpA、PFOS去除率下降,PFBA下降幅度最为明显(图5(c)~(d))。因此,2组生物滞留池对PFCs的去除沿柱深方向呈现先增加后降低的趋势,说明填料层对PFCs结合不稳定,加之生物滞留池排水快速,短时间内微生物降解难以发挥作用。连续降雨情况下,PFCs可能在生物滞留池发生浸出,导致PFCs出水浓度高于进水浓度。就具体物质而言,PFHxA、PFPeA、PFBA、PFHpA去除率接近100%,而PFBA和PFOS的去除率较低(60%),但该差异原因尚不清楚。
2)全氟化合物在生物滞留池中的浸出情况。生物滞留池在运行近3个月后,为进一步分析PFCs在生物滞留池中的浸出情况,采用加入硫代硫酸钠除氯后的自来水作为进水,测定滞留池各出水口PFCs浓度。由图6(a)可见,1#生物滞留池4号出水口PFOS有明显降低,说明种植层土壤仍对PFCs有截留作用;5~8号出水口PFCs出水浓度呈升高趋势,甚至出现了进水含量较低的PFNA、PFHpA;7号出水口PFHpA的浸出尤为明显;PFOA在8号出水口的出水质量浓度达到705.25 ng·L−1。上述结果证实了PFCs截留在5~8号出水口的填料层,但并未被转化降解。由图6(b)可见,2#生物滞留池中同样存在PFCs浸出情况,但PFOA的浸出量较1#生物滞留池(147.70 ng·L−1)大幅减少,说明煤质活性炭中PFCs不易脱出,运行稳定性更有保障。
3)生物滞留池对全氟化合物去除效果的长期稳定性情况。通过分析2021年3—11月生物滞留池底部出水口PFCs去除率,判断其长期使用潜能。如图7所示,由1#生物滞留池对PFCs去除效能随降雨次数的增加而降低。具体来说,3—4月间PFBA、PFHxA、PFOA和PFOS去除率逐次降低,甚至出现负值即存在浸出现象。但值得注意的是,上述物质去除效能在间隔2个月后得到恢复,推断长时间干旱条件下,PFCs在池内出现了降解转化,释放了填料层的吸附容量,后续需结合微生物实验验证。
如图8所示,2#生物滞留池对PFCs去除效果远优于1#生物滞留池,说明其具有长期使用的潜能。PFHxA、PFHpA、PFNA、PFOS的去除较稳定(>60%),其中PFOA去除率高于 85%,这个结果印证了煤质活性炭具有高效地吸附去除PFOA的能力[22],PFPeA去除率有一定波动,均值为62.12%。
3. 结论
1) 1#生物滞留池对径流水量的平均削减率为(30.3±6.2)%,2#生物滞留池对径流水量的平均削减率为(29.3±10.1)%。随着投入使用时间的延长,2组生物滞留池的水量削减率均呈现波动下降的趋势,其中2#生物滞留池的下降趋势明显。
2) 2组生物滞留池对常规污染物均有较好的去除效果。其中,2#生物滞留池对COD、TP、TOC、TN 的去除率分别为84.6%、62.4%、92.7%、85.6%。生物滞留池对常规污染物的去除主要依靠填料层的吸附作用,但种植层中植物根系与土壤也具备一定的净化能力。在经过将近1 a后,2#生物滞留池对常规污染物仍保持较好的去除效果。
3) PFCs在生物滞留池中浓度分布规律明显。PFBA主要集中于种植层,而PFPeA、PFHxA、PFHpA、PFOA、PFOS、PFNA则更集中于填料层,1#生物滞留池对PFCs的去除效果在0.5 a后由明显下降,而2#生物滞留池对多数PFCs的去除效率还保持在较高的水平,说明其具有长期使用的潜能。
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表 1 DES半定量检测试纸和ELISA检测试剂盒对实际样品的检测结果
Table 1. The detection results of DES semi-quantitative test strip and ELISA kit on actual samples
采样位置Sample collection site 加标浓度/ (ng·mL−1) Spiked concentration 试纸检测值/ (ng·mL−1)Results from test strip ELISA试剂盒检测值/ (ng·mL−1)Results from ELISA kit 黄水河入库口Reservoir mouth — ND* ND 水库中心Reservoir center — ND ND 5 ≤5 4.18 10 5-10 8.49 20 10-20 17.30 水库大坝Reservoir Dam — ND ND *ND., 未检出. ND., not detected. -
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