中试装置建在北京市某自来水厂实验基地内，装置采用的水处理工艺流程包括混凝-沉淀-砂滤-多相芬顿催化氧化-活性炭过滤，装置流程如图1所示。本研究所使用的多相芬顿催化剂以氧化铝小球为载体，以铜、钴等化合物为主要成分，并以吨级规模工业合成(目前尚未商品化生产)，LYU等^[16]对该类催化剂已有较多的研究报道。多相芬顿催化柱流量30 L·min⁻¹、水力停留时间为15 min、投加过氧化氢量为0.15 mmol·L⁻¹、活性炭柱流量为30 L·min⁻¹、水力停留时间为15 min、反冲周期为7 d。

由于该水厂原水中没有检测到双酚A的存在，而且考虑到在水厂中人为添加微量污染物实验排水会影响环境，因此，在中试现场对水体中NOM进行了为期200 d的去除研究，同时考察了对消毒副产物和致病微生物控制效果，相关的研究结果^[17]已发表。芬顿催化柱高度为4.0 m，经过长时间运行之后，在芬顿催化柱上、中、下层(柱高分别为3.6、1.8和0.5 m处)分别取适量材料，之后在实验室进行双酚A去除的小试研究。把上、中、下3层催化剂材料分别填装，共填装6根小柱(柱子尺寸40 mm×30 cm)：3根小柱分别装填上、中、下3层的多相芬顿催化剂，另外3根小柱装填上、中、下3层经过超声振荡并清洗后无生物膜的多相芬顿催化剂。

实验分别在2种条件下运行，一种配制进水双酚A浓度为10 μg·L⁻¹，运行条件与中试相同，停留时间为15 min；另一种条件配制进水双酚A浓度为5 mg·L⁻¹、停留时间为40 min。2种实验条件分别连续运行7 d，并于第2、4和6天取样，分析2种条件下双酚A的去除率，且考察了生物膜对双酚A去除效果的影响。

中试实验流程进水采用水厂水源水经预氯化后水，经检测水质如下：温度为(20±2) ℃、浊度为3.0 NTU、DOC为(3.5±0.6) mg·L⁻¹、pH=7.6~8.6、硬度为80~126 mg·L⁻¹(以CaCO₃计)、碱度为75~126 mg·L⁻¹(以CaCO₃计)、其他各种离子(2~3 mg·L⁻¹ $ {\rm{NO}}_3^ - $-N、4~8 mg·L⁻¹ Cl⁻、0.2~0.5 mg·L⁻¹ F⁻、21~36 mg·L⁻¹$ {\rm{SO}}_4^ {2-} $)。

水中溶解性有机碳 (DOC) 采用TOC分析仪(TOC-V_CPH，SHIMADZU, Japan)。H₂O₂浓度利用辣根过氧化氢酶采用分光光度法分析。

在进行催化剂上生物膜采样时，首先把催化剂进行冷冻干燥然后称取一定量的催化剂利用灭菌棉签擦拭催化剂表面，并用磷酸盐缓冲溶液(PBS)进行冲洗，然后把棉签和磷酸盐缓冲溶液一起进行超声震荡，收集PBS溶液^[17]。催化柱上中下层出水各采集1 L溶液。上、中、下3层出水及生物膜各取样3个，分别标记为生物膜上层(RS1.1、RS1.2、RS1.3)，生物膜中层(RS2.1、RS2.2、RS2.3)，生物膜下层(RS3.1、RS3.2、RS3.3)，上层出水(RS4.1、RS4.2、RS4.3)，中层出水(RS5.1、RS5.2、RS5.3)和下层出水(RS6.1、RS6.2、RS6.3)。

把溶液过0.45 µm聚碳酸酯膜，然后用Fast DNA spin kit for soil(Qbiogene，Solon，OH)试剂盒进行DNA基因提取。利用7300实时荧光定量聚合酶链式反应系统仪器(7300 Real Time PCR System)分析检测总细菌(16S rRNA)，用于表征催化剂表面的微生物量。同时基于IonS5^TMXL测序平台，利用单端测序方法构建小片段文库进行单端测序。通过对Reads剪切过滤，OTU(operational taxonomic units)聚类，β多样性分析采用算术均值的非加权配对平均法(unweighted pair-group method with arithmetic mean, UPGMA)聚类分析。最后根据16S测序数据进行基于KEGG数据库的功能预测。

对传统的热提取方法进行了优化，以提取生物膜中微生物的胞外多聚物(EPS)，具体步骤参照文献中的方法^[18]。然后用Folin苯酚比色法测定EPS中的蛋白质，以牛血清白蛋白为标准物质。用苯酚硫酸比色法测定EPS中的多糖，以葡萄糖为标准物质，并使用三维荧光(EEM)对EPS进行成分分析。

低浓度双酚A首先利用固相萃取柱进行浓缩，然后利用超高效液相色谱四极杆-飞行时间质谱联用仪(UPLC-Q-TOF-MS，ACQUITY UPLC/Xevo G2 Q-TOF，Waters)。

多相芬顿催化柱中试实验连续运行200 d，运行周期内多相芬顿催化柱进出水溶解性有机碳(DOC)变化如图2所示。砂滤出水(多相芬顿催化柱进水)的DOC为(3.12±0.51) mg·L⁻¹，经过多相芬顿催化剂处理后DOC值降低至(1.96±0.49) mg·L⁻¹，在相同运行时间条件下比砂滤出水降低了42%~63%。由图2可以看出，多相芬顿催化柱对NOM有很好的去除效果。另外，在中试运行120 d以后，多相芬顿出水DOC出现稳中有降的趋势，这可能与生物膜的形成有关。

为了分析生物膜对芬顿催化剂去除双酚A的影响，我们对上、中、下3层具有不同生物膜的催化剂材料分别进行了小试实验。根据国家标准《生活饮用水卫生标准》(GB 5749-2006)中生活饮用水水质参考指标及限值规定，饮用水中双酚A浓度不得高于10 µg·L⁻¹，因此，我们选择此浓度为低浓度进行研究。图3反映了不同起始浓度下双酚A的降解率。如图3(a)所示，在停留时间仍然为15 min且在不加H₂O₂的条件下，低浓度(10 µg·L⁻¹)双酚A在无生物膜的上、中、下3层催化剂中的去除率分别为24.9%、27.6%和28.3%，而在有生物膜的上、中、下3层催化剂上去除率分别为36.0%、37.4%和37.8%。该结果说明，上、中、下3层催化剂洗去生物膜后，对双酚A去除效果基本相同，而具有不同生物膜群落组成的上、中、下3层催化剂对其去除效果也基本相同。但是，有生物膜的催化剂明显比没有生物膜的催化剂去除效果更好。

除了低浓度双酚A，本研究还进行了高浓度5 mg·L⁻¹双酚A的去除实验，由于其浓度较高，控制停留时间为40 min，结果如图3(b)所示。与低浓度双酚A的实验结果类似，有生物膜的催化剂比没有生物膜催化剂对双酚A的去除率较高，而且有生物膜的催化剂从上层到下层其对双酚A的去除能力有逐渐增强趋势，在下层中对双酚A的去除率达到了39%。

因此，在中试条件下，控制多相芬顿催化柱流量30 L·min⁻¹，水力停留时间为15 min，投加过氧化氢量为0.15 mmol·L⁻¹，冲洗周期为7 d的条件下，多相芬顿催化柱表面形成的生物膜影响了小试过程中双酚A的去除，使得双酚A去除率有所提高，同时发现，随着停留时间的延长，下层生物膜影响较大。

1)微生物群落多样性。根据实验分析方法描述，对催化柱上中下3层进行生物膜和出水中微生物采样分析，图4为6组样品的所有平行样，共18个，在微生物门水平(phylum level)上对其多样性基于进化序列差异(unweighted unifrac)距离矩阵进行的UPGMA聚类树分析。由图4可以看出，生物膜和水中微生物各自聚类在一起，这说明生物膜和水中微生物存在差别。有研究^[19]表明，过滤过程中生物膜对其出水中微生物存在决定作用，该结果上层出水与生物膜相似性高，中下层出水与生物膜差别大，这可能是由于H₂O₂从催化剂底部投加，中、下层为H₂O₂初始反应阶段，产生的羟基自由基对水体中微生物生长影响较大。另外，中层生物膜RS2.1、RS2.2、RS2.3和下层生物膜RS3.1、RS3.2、RS3.3聚类在一起，相似度较高，与上层生物膜有一定差别，该结果同样说明，随着反应不断进行，H₂O₂浓度有搜降低，从而影响了生物膜群落组成。有研究^[20]表明，加氯消毒过程对微生物群落结构影响较大，该结果也说明，多相芬顿反应投加H₂O₂能够影响微生物群落结构组成。

2)微生物群落组成。为了进一步分析生物膜及出水中微生物群落组成，对生物膜及出水微生物在属水平上相对丰度在前10的微生物进行作图分析(每组样品3个平行样取平均值作图)，如图5所示。通过对比分析发现，上层生物膜RS1中赫山单胞菌属(Herminiimonas)、慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)、鞘氨醇盒菌属(Sphingopyxis)和旱杆菌属(Aridibacter)4种微生物菌属较多，其对应的相对丰度分别为23.9%、20.5%、8.5%和7.3%。中层生物膜RS2中这4种菌属分别降低至2.1%、5.6%、0.3%和0.06%，下层生物膜RS3这4种微生物菌种降低至2.2%、6.3%、0.3%和0.2%。但是在中层RS2和下层RS3生物膜中Reyranella菌属和生丝微菌属(Hyphomicrobium)含量明显升高。RS2中相对丰度分别为12.2%和3.1%，RS3中分别为19.4%和4.7%。另外，催化柱上、中、下3层出水微生物变化较大，在上层出水RS4中鞘氨醇单胞菌属(Sphingomonas)、水杆菌属(Aquabacterium)、赫山单胞菌属(Herminiimonas)和慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)相对丰度较高。中层出水RS5中Aquicella和生丝微菌属(Hyphomicrobium)相对丰度较高。下层出水RS6中赫山单胞菌属(Herminiimonas)、慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)、柄杆菌属(Caulobacter)相对丰度高。结果表明，相比于生物膜，不同层出水中微生物群落组成变化较大。另外，投加H₂O₂是从催化柱下面投加，H₂O₂接触到催化剂表面生成羟基自由基(∙OH)对有机物进行降解并灭活微生物，随着反应进行从下层到上层H₂O₂浓度逐渐降低。因此，生物膜中赫山单胞菌属(Herminiimonas)、慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)、鞘氨醇盒菌属(Sphingopyxis)和旱杆菌属(Aridibacter)相对丰度从下层到上层逐渐增加，但是芬顿催化柱中层和下层生物膜群落组成相似，其中，Reyranella菌属和生丝微菌属(Hyphomicrobium)含量明显比上层高。

3)微生物功能分析。根据测序样品在数据库中的功能注释及丰度信息，从功能查阅层面进行聚类分析。其中，微生物功能分析包括细胞过程、环境信息处理、遗传信息处理、关于人类疾病、新陈代谢、有机系统、无法归类和无功能共8种。在环境信息处理和新陈代谢方面，中层和下层催化剂生物膜的微生物功能更强。以上结果说明，受周围环境H₂O₂和有机物浓度的影响，中层和下层催化剂生物膜的微生物表现出更强的代谢能力。

通过对生物膜上微生物16S rRNA进行定量分析，发现下层微生物总细菌含量最多，微生物基因拷贝数高达8个对数量级；中层其次，上层最少，分别为7.8个和7.7个对数量级(图6(a))。由对催化剂表面生物膜上胞外多聚物EPS表征结果可以看出，在中、下层的生物膜上微生物EPS中蛋白质含量较高，分别高达624.3 ng·g⁻¹和642.8 ng·g⁻¹(图6(b))。

因此，中试过程中从催化柱下部投加H₂O₂溶液，起始投加量为5 mg·L⁻¹，随着反应的进行，从下到上的H₂O₂浓度逐渐降低，出水H₂O₂浓度为0.45 mg·L⁻¹。随着催化柱从下到上H₂O₂浓度变化及其对有机物的降解，多相芬顿催化柱上、中、下3层出水中微生物群落组成变化较大，但是生物膜上微生物群落存在相似性，其中，中层和下层相似度高。上层生物膜中微生物以赫山单胞菌属(Herminiimonas)和慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)为主，而中层和下层生物膜中微生物以Reyranella菌属和生丝微菌属(Hyphomicrobium)为主。另外，中层和下层生物膜中微生物量相比上层多，代谢能力强，生物膜上微生物分泌的EPS多，蛋白质含量高，微生物吸附性能有所增强^[21]，这可能会影响催化柱对天然有机物和微量污染物的去除。小试实验结果证明，生物膜的形成影响了对双酚A的去除。在停留时间为15 min时，有生物膜的催化柱明显比没有生物膜的催化柱对10 µg·L⁻¹双酚A的去除率高，但对于有生物膜的上、中、下层，其对双酚A的去除率差别不大。当停留时间在40 min后，有生物膜的催化柱比没有生物膜的催化柱对5 mg·L⁻¹双酚A去除率要高，而且下层对双酚A的去除率最高，可能与下层生物膜中Reyranella菌属和生丝微菌属(Hyphomicrobium)含量较高有关。

在多相芬顿催化体系中，H₂O₂除了与释放到溶液中的少量金属离子发生链反应外，主要与催化剂发生界面反应，多相芬顿反应需要高活性的催化剂，其可提高H₂O₂的利用率^[13]。本研究结果表明，在多相芬顿催化柱运行过程中，很难避免生物膜的形成，而对于微量污染物双酚A，生物膜可以提高对其的去除效果。但是，生物膜对不同种类和浓度的污染物去除的影响还需要进行深入的研究和探索，从而更好的优化运行多相芬顿催化柱，以便能尽早的解决实际问题。另外，建议今后要深入开展生物膜对芬顿反应去除不同微量污染物的影响研究。

1)多相芬顿催化柱在中试运行过程中对天然有机物表现出良好的去除效果，而实验过程中形成的生物膜可提高对双酚A的去除率。在无生物膜条件下，多相芬顿反应对双酚A的去除率低于30%，而在生物膜形成后，对双酚A的去除率可提高到36%~39%。

2)通过对催化柱上生物膜进行表征，发现催化柱生物膜上微生物群落存在相似性，其中，中层和下层相似度高。上层生物膜中微生物以赫山单胞菌属(Herminiimonas)和慢生根瘤菌属(Bardyrhizobium)为主，而中层和下层生物膜中微生物以Reyranella菌属和生丝微菌属(Hyphomicrobium)为主。

3)随着生物膜上微生物群落组成的变化，多相芬顿催化柱由上层到下层生物膜上生物量有所增加，微生物代谢活性增强，从而分泌更多的胞外多聚物，这可能是有生物膜的催化柱特别是下层催化柱可更好地去除双酚A的主要原因。