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基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用

徐晓庆, 苏命, 朱宜平, 崔长征, MUHAMMAD Suruzzaman, 徐亚楠, 于建伟, 杨敏. 基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用[J]. 环境工程学报, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
引用本文: 徐晓庆, 苏命, 朱宜平, 崔长征, MUHAMMAD Suruzzaman, 徐亚楠, 于建伟, 杨敏. 基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用[J]. 环境工程学报, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
XU Xiaoqing, SU Ming, ZHU Yiping, CUI Changzheng, MUHAMMAD Suruzzaman undefined, XU Yanan, YU Jianwei, YANG Min. Evaluation of typical odorant 2-methylisoborneol based on real time qPCR in source water and its application[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
Citation: XU Xiaoqing, SU Ming, ZHU Yiping, CUI Changzheng, MUHAMMAD Suruzzaman undefined, XU Yanan, YU Jianwei, YANG Min. Evaluation of typical odorant 2-methylisoborneol based on real time qPCR in source water and its application[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184

基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用

    作者简介: 徐晓庆(1994—),女,硕士研究生。研究方向:饮用水源地产嗅风险评估与调控。E-mail:lovelyyokyo@163.com
    通讯作者: 崔长征(1978—),男,博士,副教授。研究方向:环境微生物利用等。E-mail:cuichangzheng@ecust.edu.cn
  • 基金项目:
    国家水体污染控制与治理科技重大专项(2017ZX07108-002-02);国家自然科学基金资助项目(51878649)
  • 中图分类号: X832

Evaluation of typical odorant 2-methylisoborneol based on real time qPCR in source water and its application

    Corresponding author: CUI Changzheng, cuichangzheng@ecust.edu.cn
  • 摘要: 我国地表水源中由丝状蓝藻代谢产生2-甲基异莰醇(2-MIB)导致的嗅味问题十分普遍。由于传统显微镜检测方法无法鉴别产嗅藻种,不能满足水源水质管理要求,故有必要构建能特异性表征水体产嗅潜力的检测方法。由于丝状藻代谢产生2-MIB主要受其合成功能基因调控,设计了2-MIB功能基因引物,经引物特异性检验及PCR条件优化后,构建了基于2-MIB功能基因的定量PCR方法,并采用实际环境样品进行测试与验证。结果表明:引物特异性良好,定量PCR方法能有效检测2-MIB功能基因,并绘制了标准曲线,得出检测限为8.44×102 copies·L−1;实际样品测试结果显示其2-MIB功能基因浓度在2.09×107~1.94×1010 copies·L−1范围内,与基于仪器分析方法测定的2-MIB浓度符合线性关系(R2=0.63,P<0.01),表明定量方法可行。该方法具有灵敏性高、特异性好的特点,能特异性检测产嗅基因,可应用于水源地中产嗅潜力评估与预警。
  • 汞具有长距离迁移性和生物富集性,可以在大气中停留数月至1 a,随气流长距离传输,造成远离污染源地区环境汞污染。我国是全球大气汞排放量最大的国家,大约占全球大气汞排放量的30%,所以我国汞控制排放对全球汞减排具有重要意义[1-2]。因此,我国作为全球大气汞排放量最大的国家,汞排放控制也得到全球的广泛关注,面临巨大的履约压力。2021年,WU等[2-3]探究了2021年我国重点行业大气汞排放量为314 t,其中燃煤电厂和工业锅炉排放量分别为36 t和24 t,占总排放量的19.1%。因此,煤炭燃烧是我国汞排放控制的重点行业。

    相较于国外燃煤行业专门汞控制技术(活性炭喷射技术),我国燃煤行业普遍采用污控措施协同控制措施降低烟气汞排放浓度。以燃煤电厂为例,目前燃煤电厂的污控措施基本都具有选择性催化还原(selective catalytic reduction,SCR)催化剂、除尘设备、湿法脱硫设备(wet fuel gas desulfurization device,WFGD)。汞在烟气中主要存在3种形态:气态元素汞(Hg0)、气态氧化汞(Hg2+)和颗粒态汞(Hgp[4-6]。Hg2+和Hgp分别被WFGD和除尘设备控制捕集下来,捕集效率高达80%和99%以上。Hg0不易溶于水和被除尘捕集,所以燃煤行业烟气汞主要以Hg0形式存在。因此,燃煤行业汞减排关键在于通过催化剂将Hg0转化为Hg2+,进而被脱硫设备捕集。

    目前,燃煤电厂普遍采用钒钨钛催化剂作为商业脱硝催化剂,但V2O5的高毒性、致癌性等特点限制了钒钨钛催化剂的使用。氧化铈(CeO2)具有良好储氧能力和氧化还原特性,可以作为催化剂V2O5的替代活性组分[7-9]。以往的研究表明,Ce基催化剂表现出良好的NOx还原能力或Hg0氧化能力,但单一的CeO2难以满足NOx还原和Hg0氧化双重催化需求,构建多活性位点多反应区域是满足NOx和Hg0协同控制的重要条件。CeMnTi催化剂具备良好的Hg0氧化性能和NOx低温还原性能,但CeO2高氧化性使SO2转化为Ce(SO4)2或Ce2(SO4)3,造成催化剂失活[10-12]。基于以上研究,开发SCR烟气条件下具备Hg0高效氧化和良好抗硫性能的催化剂尤为必要。

    基于以上研究结果与不足,考虑到NH3、SO2和Hg0酸碱性的差异,本研究以CeO2为活性位点、TiO2为载体、WO3和CuO为改性剂,制备多种Ce基催化剂,构建酸碱性多反应活性区域,分离NH3、SO2和Hg0吸附反应区域,降低NH3、SO2和Hg0的竞争吸附,提高催化剂Hg0氧化能力,探究了催化剂协同催化脱除和抗硫反应机制,为燃煤行业多污染协同控制和多设备协同控汞提供理论依据。

    本研究采用德固赛公司生产的商业TiO2 (P25) 作为催化剂的载体。基于已有研究[13]结果,将一定量的Ce(NO3)3·6H2O和草酸溶解于去离子水,按照Ce:W:Cu:Ti比例添加一定量的(NH4)10H2(W2O7)6和Cu(NO3)2,再添加一定量的P25形成混合溶液,微波处理15 min。将混合溶液搅拌24h,然后再放入110 ℃烘箱中干燥12 h,最后在马弗炉中500 ℃焙烧4h后,自然降温到25 ℃,制备出不同Ce基催化剂。将催化剂研磨压片过筛得到40~60目催化剂样品用于汞氧化实验。所得催化剂包括Ce5Ti(Ce∶Ti=5∶95)、Ce5W9Ti(Ce∶W∶Ti=5∶9∶86)以及Cu5Ce5W9Ti(Cu∶Ce∶W∶Ti=5∶5∶9∶81)。

    本研究采用X射线衍射(XRD)、X射线光电子能谱(XPS)、H2程序升温还原测试(H2-TPR)、CO2程序升温脱附分析(CO2-TPD)和X射线透射电镜(TEM)等表征手段对反应前后的催化剂进行表征,分析催化剂表面理化性质,探究汞氧化反应机制。XRD 物相分析采用Bruker D8 (德国布鲁克公司),管电流30 mA,管电压40 kV,扫描角度2θ为10°~90°,扫描速度为2 °·min−1。XPS分析采用X射线光电子能谱仪(Thermo ESCALAB 250XI)分析催化剂表面Cu、Ce、W、Ti、O、S、N、Cl和Hg元素的价态。H2-TPR实验采用AutoChem II 2920 型化学吸附仪 (Micrometritics Co.),实验步骤如下:取 50 mg 样品(40~60 目),在纯氧气氛下 400 ℃ 预处理 30 min;降温到50 ℃后用He吹扫15 min;然后通入体积分数为10% H2+90%Ar混合气,待仪器基线平稳后,以10 ℃·min−1速率升温至600 ℃,采用TCD 检测耗氢量。CO2-TPD实验步骤如下:取100 mg 样品 (40~60 目),在氦气氛下经500 ℃预处理30 min;冷却至50 ℃,再通入30 mL·min−1的CO2吸附至饱和,氦气吹扫1h 后开始TPD 实验,以10 ℃·min−1 速率升温至800 ℃,采用TCD 检测。

    本研究采用固定床实验装置探究催化剂汞氧化性能。该固定床实验装置包括四部分:模拟烟气配气系统、汞源发生系统、催化反应系统和汞浓度与形态测试系统。催化反应系统通过加热系统精准调控反应温度,温度误差≤2 ℃。模拟烟气配气系统包括高纯氮气(N2)、氧气(O2)、标准混合气(HCl、SO2、NO和NH3等)和80 μg·m−3 Hg0,标准混合气均采用N2作为平衡气。以上标准气体均采用质量流量控制器控制气体添加,混合气体总流量为1L·min−1。空速是催化剂催化氧化性能的重要实验参数,本实验催化剂空速约为100 000 h−1。研究中各种模拟烟气组分见表1。反应前后烟气中Hg0和Hg2+的浓度通过烟气分析仪分析(Thermo Fisher 80i)。汞氧化率通过式(1)计算。

    表 1  汞催化氧化实验模拟烟气组分
    Table 1.  The components of simulated flue gas in mercury oxidation experiments
    序号 组分 温度 元素比例
    1 基本烟气组分 100~450 ℃ 6%O2+N2
    2 SCR烟气组分 200、300和400 ℃ 6%O2+134 mg·m−3 NO+76 mg·m−3 NH3+N2
    3 SCR+HCl烟气组分 200、300和400 ℃ 6%O2+134 mg·m−3 NO+76 mg·m−3 NH3+16 mg·m−3 HCl+N2
    4 SCR+SO2烟气组分 200、300和400 ℃ SCR组分+1 429 mg·m−3 SO2
    5 SCR+HCl+SO2烟气组分 200、300和400 ℃ SCR组分+16 mg·m−3 HCl+1 429 mg·m−3 SO2
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    η=CHg2+CHgt×100% (1)

    其中:η为汞氧化率,%;CHg2+和CHgt 分别代表反应管出口烟气Hg2+浓度和入口烟气总汞浓度,μg·m−3。所有数据为3组平行实验的平均值,实验数据相对误差不超过10%。

    在基本烟气组分条件下,本研究对比了Ce5Ti、Ce5W9Ti和Cu5Ce5W9Ti催化剂的汞氧化性能。如图1所示,Ce作为一种中温活性组分,Ce5Ti和Ce5W9Ti在中温区间(250~400 ℃)表现出最佳的汞氧化性能,Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂汞氧化率分别达到58.4%~69.1%和68.8%~81.3%。Ce5Ti和Ce5W9Ti在低温区间(100~200 ℃)的汞氧化率普遍较低,分别低于53.1%和62.5%,表现出较差的低温活性。CuO掺杂的Cu5Ce5W9Ti表现出最佳的汞氧化性能,在300 ℃下汞氧化率达到最高,为88.8%。在中温区间,Cu5Ce5W9Ti的汞氧化率稳定在86.3%~88.8%。反应温度进一步上升到450 ℃,3种催化剂的汞氧化率均降低,说明温度过高使CeO2的催化氧化活性降低。与Ce5Ti和Ce5W9Ti相比,Cu5Ce5W9Ti在低温区间(100~200 ℃)表现出较高的汞氧化率,为76.3%~85.5%,表明CuO的掺杂可显著提升Ce基催化剂低温氧化活性。

    图 1  Ce基催化剂对汞的氧化性能(基本烟气组分)
    Figure 1.  Mercury oxidation efficiency of various Ce-based catalysts (basic flue gas)

    本研究对比了3种催化剂在基本烟气组分和SCR烟气组分条件下的汞氧化活性的差异性。如图2所示,在300 ℃下,相较于基本烟气组分,Ce5Ti催化剂在SCR烟气组分下汞氧化率明显降低,由62.7%下降到37.2%。在SCR烟气组分条件下,Ce5W9Ti催化剂汞并没有表现出明显的降低,汞氧化率由73.8%下降到62.4%,表明WO3掺杂明显提高了Ce5W9Ti催化剂对SCR反应条件的适应性。有研究[14-15]表明,SCR烟气组分可降低催化剂的汞氧化活性,这主要归咎于NH3与Hg0对活性位点的竞争吸附作用,高浓度的NH3分子明显降低了Hg0与活性位点接触的可能性。Cu5Ce5W9Ti催化剂SCR烟气组分条件下汞氧化表现与Ce5W9Ti相似,汞氧化率略微降低,由88.8%下降到81.3%,依然表现出较好的SCR烟气组分的适应性。

    图 2  SCR烟气组分对Ce基催化剂汞氧化性能影响
    Figure 2.  Mercury oxidation efficiency of various Ce-based catalysts at SCR flue gases

    在200 ℃和400 ℃的条件下,SCR烟气组分对催化剂具有相似的的影响。在200 ℃下,SCR烟气组分对Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂汞氧化抑制作用较为明显,而在400 ℃下,SCR烟气组分的抑制作用相对减少。这可能是因为Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂缺失低温活性组分,低温条件下NH3吸附量增加,汞氧化性能较低;而高温条件下NH3吸附量降低,减少了对Hg0抑制吸附作用,提高催化剂汞氧化性能。

    SO2和HCl是燃煤烟气普遍存在的酸性气体,对催化剂汞氧化性能具有重要影响。通过以上实验筛选,本研究对比了Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂在SCR烟气组分、SCR+SO2烟气组分、SCR+HCl烟气组分以及SCR+SO2+HCl烟气组分中的汞氧化性能变化,分析SO2和HCl对Ce5W9Ti和Cu5Ce5W9Ti催化剂影响。

    图3所示,在SCR烟气组分(300 ℃)下,1 429 mg·m−3 SO2 的添加明显降低了Ce5W9Ti催化剂的汞氧化性能,汞氧化率从62.4%降低到41.4%,表明SO2严重抑制了Ce5W9Ti催化剂汞氧化活性。有研究表明:高浓度SO2极容易吸附在CeO2活性位点,形成稳定的硫酸铈,使Ce基活性位丧失储氧能力[14]。SO2同样降低了Cu5Ce5W9Ti催化剂的汞氧化性能,但汞氧化率下降幅度较小,由81.3%下降到78.8%。该结果表明CuO的掺杂明显提高了催化剂的抗硫性能,可能是CuO的掺杂增加了反应活性位点或是保护了Ce基活性位点,使得Cu5Ce5W9Ti在SO2存在条件下依然具有较高的汞氧化性能。在200 ℃下,SO2对Ce5W9Ti和Cu5Ce5W9Ti的汞氧化性能抑制作用进一步提高。常化振等[16]研究表明,在低温条件下SO2与NH3形成大量的亚硫酸氢铵,覆盖了催化剂表面的活性位点,导致催化剂活性较低。在400 ℃条件下,SO2的抑制作用减弱,可能因为高温抑制了SO2吸附和亚硫酸氢铵的形成[16]

    图 3  SO2和HCl对Ce基催化剂汞氧化性能影响
    Figure 3.  Mercury oxidation efficiency of various Ce-based catalysts at the presence of SO2 and HCl

    HCl的添加明显提高了Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂汞氧化性能,汞氧化率分别提高到96.2%和98.4%。该结果表明HCl的添加可能增加了新的活性位点,促进了汞氧化率。进一步添加1 429 mg·m−3 SO2到模拟烟气,Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂出现下降,但Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂在SCR+HCl+SO2烟气组分下汞氧化率(76.8%和89.7%)依然明显高于SCR组分下汞氧化率(62.4%和81.3%)。该结果表明相较于SO2,HCl更具有竞争力,在催化剂表面依然形成新反应活性位,促进了Hg0的吸附和氧化。在200 ℃和400 ℃下,HCl显著提高了Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti的汞氧化率和抗硫性能。

    1) XRD分析。采用XRD技术分析了不同Ce基催化剂的晶相(图4)。3种催化剂XRD谱图主要以锐钛矿和红金石2种形态TiO2特征峰为主(JCPDS 21-1272),符合载体P25组分80.0%锐钛矿和20.0%红金石组成特征。3种催化剂在2θ=28.35°位置出现一个微弱的CeO2晶峰,表明Ce在载体表面高度分散,具备较高的催化氧化活性。Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂都没有出现明显的WO3晶峰,说明元素W在催化剂表面同样高度分散。Cu5Ce5W9Ti催化剂在35.5o和38.6o位置出现了微弱的CuO(111)特征峰(JCPDS 48-1548),证明Cu活性组分绝大部分均匀分布在催化剂表面。基于以上结果,Ce、W和Cu元素在载体表面高度均匀分散[13]

    图 4  Ce基催化剂XRD分析
    Figure 4.  XRD patterns of Ce-based catalysts

    2) TEM分析。采用TEM分析了不同Ce基催化剂表面的元素晶体形态,结果见图5。如图5(a)所示,催化剂载体P25主要以立方体形态存在。如图5(b)和图5(c)所示,Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂表面CeO2以(111)晶型存在,晶格间距为0.31 nm,与XRD的分析结果一致。Ce5W9Ti催化剂表面没有发现WO3晶体,但Ce与Ti掺杂形成钛铀矿CeTi2O6(110)[17],晶体间距为0.34 nm,说明W元素的高度分散有利于Ce与Ti原子的螯合掺杂,可形成稳定的氧空位。如图5(d)所示,Cu5Ce5W9Ti催化剂表面出现间距为0.28 nm的CuO(110)晶格条纹和间距为0.31 nm的CeO2(111)晶格条纹,CuO与CeO2界面形成掺杂晶体界面。在界面位置,CuO、CeO晶体中的原子被相互替代,形成晶体错位,晶体条纹边界发生扭曲转移,促进大量Cu+和Ce3+形成,使催化剂表面形成氧空位,从而提高催化剂的储氧和氧化还原能力[18]

    图 5  Ce基催化剂TEM分析
    Figure 5.  The TEM images of Ce-based catalysts

    3) TPRTPD分析。本研究采用H2-TPR和CO2-TPD技术分析了Ce5Ti、Ce5W9Ti和 Cu5Ce5W9Ti催化剂氧化位点和活性位点酸碱性。如图6(a)所示,Ce5Ti催化剂H2-TPR图谱出现一个270 ℃的主峰,代表CeO2形成的氧空位或活性位点。Ce5W9Ti催化剂的H2-TPR图谱中出现240 ℃和282 ℃ 2个主峰,结合TEM分析结果,除了CeO2活性位点,Ce与Ti掺杂形成的钛铀矿CeTi2O6(110)建 立新的活性位点[17]。因此,Ce5Ti、Ce5W9Ti催化剂在中温区间(250~400 ℃)表现出良好的汞氧化性能。如图6(a)所示,Cu5Ce5W9Ti催化剂的H2-TPR图谱中出现115、260和317 ℃ 3个主峰。260 ℃和317 ℃代表中温CeO2活性位点和Ce-Ti活性位点,115 ℃代表低温CuO活性位点,表明CuO的掺杂可提高催化剂在低温区域活性位点的形成。因此,Cu5Ce5W9Ti催化剂在图1表现出较高的低温(100~200 ℃)汞氧化性能。

    图 6  Ce基催化剂程序升温测试分析
    Figure 6.  Temperature programmed desorption of Ce-based catalysts

    图6(b)所示,通过CO2-TPD分析了3种催化剂表面活性位点的酸碱性。有研究[19-20]表明,根据CO2脱附温度可将活性位点酸碱性分为弱碱(100~250 ℃)、中强碱(250~600 ℃)和强碱(600~800 ℃)。在Ce5Ti的CO2-TPD图谱中出现一个脱附主峰(140 ℃),表明CO2主要为弱碱活性位点;Ce5W9Ti的脱附主峰温度进一步降低到132 ℃,表明酸性氧化物WO3在催化剂表面的高度分散可进一步降低催化剂碱性强度。Cu5Ce5W9Ti的CO2-TPD图谱包含3个特征峰,即132、547和649 ℃ [21-22]。在SCR+SO2烟气条件下,强酸性气体SO2优先与碱性活性位(Cu—O—Ce和CuO)反应,从而保护了CeO2活性位依然保持高活性和氧化性,因此,Cu5Ce5W9Ti在SCR+SO2烟气条件下依然表现出良好的汞氧化性能(图3)。

    4) XPS分析。本研究采用XPS技术分析催化剂表面各种元素价态,探究催化剂汞氧化机制。如图7(a)所示,Ce元素能谱图包含8个分峰:u0u1u2u3v0v1v2v3。其中u1v1代表Ce3+u0u2u3v0v2v3代表Ce4+,Ce3+一般作为氧空位或是吸附氧位点[23]。Ce5W9Ti催化剂Ce3+峰面积和Ce4+峰面积比例(Ce3+/Ce4+)为31.2%,Cu5Ce5W9Ti 的Ce3+/Ce4+面积比例上升到39.2%。该结果与TEM分析结果一致,说明CuO与CeO2掺杂形成晶体错位,形成更多Ce3+和氧空位。

    图 7  Ce基催化剂XPS分析
    Figure 7.  XPS analysis of Ce-based catalysts

    图7(b)所示,Ce5W9Ti和Cu5Ce5W9Ti催化剂表面O元素2个特征峰:529.9~530.0 eV特征峰代表晶格氧,530.8~531.0 eV特征峰代表活性氧[24-25]。活性氧一般是氧空位吸附的高活性吸附氧,为Hg0氧化的关键活性位点。Ce5W9Ti催化剂活性氧特征峰面积占比为38.7%,Cu5Ce5W9Ti的活性氧特征峰面积占比为45.8%,该结果与Ce3+/Ce4+面积比例上升一致。如图7(c)所示,Cu5Ce5W9Ti催化剂表面在932.5 eV和934.2 eV的2个主要特征峰分别代表Cu+和CuO[26]。Cu5Ce5W9Ti催化剂表面Cu主要以Cu+形式存在,这与Cu、Ce原子掺杂形成氧空位界面保持一致。Cu5Ce5W9Ti催化剂反应前后Cu+/CuO比例由69.4%下降到57.2%,这可能是部分Cu+形成的活性氧与SO2反应形成大量的CuSO4,因此,Cu2+比例明显上升。如图7(d)所示,Cu5Ce5W9Ti 的Ce3+/Ce4+面积比例由反应前的39.2%下降到反应后的35.4%,说明部分Ce3+活性位在反应过程中转化为稳定的Ce4+,降低了催化剂的吸氧释氧能力。如图7(e)所示,Cu5Ce5W9Ti催化剂反应前后表面O元素2个特征峰发生明显变化。Cu5Ce5W9Ti催化剂活性氧特征峰面积占比有反应前的45.8%下降到反应后的35.3%,说明大量活性氧参与了Hg0氧化和NOx还原反应。

    XPS表征没有发现反应前的Cu5Ce5W9Ti催化剂表面存在Cl、N和Hg原子。如图7(f)所示,SCR+SO2+HCl条件反应后的Cu5Ce5W9Ti催化剂表面Cl、N和Hg元素的价态。Cu5Ce5W9Ti催化剂表面Cl存在Cl离子(198.1 eV)和活性Cl*(200.2 eV)2个特征峰[17, 23]。大面积活性Cl*特征峰的出现说明HCl在Cu5Ce5W9Ti催化剂表面吸附并转化为活性Cl*,促进Hg0转化为HgCl2。NO在催化剂表面XPS能谱图出现硝酸根(407.2 eV)和NO2(405.1 eV)2个特征峰。NO2特征峰面积要远大于硝酸根特征峰面积,说明NO在催化剂上主要以更高活性的NO2或是亚硝酸盐官能团形式存在。反应后的Cu5Ce5W9Ti催化剂表面存在Hg元素101.6 eV和104.6 eV两个特征峰,表明吸附在催化剂表明的汞主要以 Hg2+形式存在。

    基于3种Ce基催化剂汞氧化实验和理化性质表征结果,本研究发现单一活性位点的Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂中温区间(250~400 ℃)表现出较高汞催化氧化活性(图1),但在SCR烟气组分下Ce5Ti的汞氧化率明显下降(图2),这归咎于NH3与Hg0竞争Ce基活性位点。WO3的掺杂提高了Ce5W9Ti在SCR烟气组分下的汞氧化率,为62.4%。CO2-TPD分析结果说明WO3的掺杂增加了Ce5W9Ti催化剂酸性(图6),增加了强碱性气体NH3的吸附位点,降低了NH3对Hg0吸附氧化竞争。同时XRD和TEM分析结果表明高度分散的WO3可促进Ce与Ti的耦合掺杂形成钛铀矿CeTi2O6(110),提高氧空位的比例。CuO的掺杂提高了Cu5Ce5W9Ti催化剂在低温区间(100~200 ℃)的汞氧化率(76.3%~85.5%),并且在SCR和SCR+SO2烟气条件下表现出较高的汞氧化率(81.3%和78.8%)。H2-TPR分析结果说明Cu掺杂增加Cu5Ce5W9Ti催化剂低温(115 ℃)活性位点,因此,提高催化剂的低温氧化活性;CO2-TPD分析结果表明W、Cu掺杂使Cu5Ce5W9Ti催化剂具备弱碱、中强碱、强碱3种活性位,可有效地分离酸性气体SO2、碱性气体NH3和Hg0吸附氧化反应区域,从而提高催化剂的抗硫性(图6)。TEM分析说明CuO和CeO2晶体掺杂的界面,发生原子替代和晶体错位,形成更多的Ce3+和Cu+作为氧空位,吸附更多的活性氧作为氧化位点,这一结论也在H2-TPR和XPS分析中得到证实(图6(a)和图7)。HCl和NO可与催化剂表面的活性氧反应,形成新的活性位点Cl*和NO2,促进Hg0氧化。综上所述,单一的活性位点难以满足NOx还原和Hg0协同控制;基于NH3、SO2和Hg0酸碱性的差异,构建强弱碱性多反应活性区域,分离NH3、SO2和Hg0吸附反应区域,降低NH3、SO2和Hg0的竞争吸附,提高催化剂Hg0氧化能力,是提高催化剂协同污控性能和抗硫性重要途径。

    1)单一活性位点的Ce5Ti和Ce5W9Ti催化剂在中温区间(250~400 ℃)表现出较高的汞氧化率,分别为58.4%~69.1%和68.8%~81.3%,但在低温区间(100~200 ℃)下的汞氧化率较低(低于53.1%和62.5%)。CuO掺杂提高了Cu5Ce5W9Ti催化剂低温活性,提高低温区间(100~200 ℃)汞氧化率至76.3%~85.5%。

    2) WO3以不定晶型的形式高度分散于催化剂的表面,可促进Ce与Ti原子的替代和掺杂,形成钛铀矿CeTi2O6(110),提高氧空位的暴露;同时酸性氧化物WO3的掺杂可增加催化剂表面酸性活性位点,促进强碱性气体NH3的吸附,进而降低NH3和Hg0对Ce基氧化位点的竞争吸附,因此,Ce5W9Ti催化剂在SCR烟气组分下依然保持较高的汞氧化性能。

    3) CuO、WO3引入在Cu5Ce5W9Ti催化剂表面形成强弱碱性多反应活性区域,分离NH3、SO2和Hg0吸附反应区域,降低NH3、SO2和Hg0的竞争吸附,提高催化剂Hg0氧化能力和抗硫性能,为多污控措施协同控制汞排放提供关键技术理论。

  • 图 1  定量PCR引物(MIBF/MIBR)凝胶电泳验证结果

    Figure 1.  Test result of qPCR primer MIBF/MIBR

    图 2  MIBF/MIBR质粒定量PCR标准曲线

    Figure 2.  Standard curve of plasmid based on primer MIBF/MIBR

    图 3  基于定量PCR方法的实际样品2-MIB功能基因丰度测试结果

    Figure 3.  Quantitative PCR-based detection result of 2-MIB functional genes in real environment samples

    图 4  基于 GC-MS分析法测定2-MIB物质浓度与qPCR方法测定2-MIB功能基因相关性检验

    Figure 4.  Correlation test of 2-MIB substance concentration based on GC-MS analysis and 2-MIB functional gene determination by qPCR method

    表 1  2-MIB功能基因引物

    Table 1.  Primers of 2-MIB function gene

    序号名称引物序列(5′~3′)FACHB-1375FACHB-1277阴性对照PCR产物长度/bp来源
    1MIB3313FCTCTACTGCCCCATTACCGAGCGA++913[19]
    MIB4226RGCCATTCAAACCCGCCGCCCATCCA
    2MIB3324FCATTACCGAGCGATTCAACGAGC++726[19]
    MIB4050RCCGCAATCTGTAGCACCATGTTGA
    3MIBS-RTFCGCTCGCTTGTGAGTGAGATAG未检测[19]
    MIBS-RTRGGCAGTAGAGTGGTGAGGCAGTT
    4MIBFGACCCAKMTCGGCTGYTGAT++389本研究
    MIBRTAGAAGCTGTCGTGCTGKCG
      注:“+”表示PCR结果为阳性,琼脂糖凝胶电泳检测结果有条带;“−”表示PCR结果为阴性,琼脂糖凝胶电泳检测结果无条带。
    序号名称引物序列(5′~3′)FACHB-1375FACHB-1277阴性对照PCR产物长度/bp来源
    1MIB3313FCTCTACTGCCCCATTACCGAGCGA++913[19]
    MIB4226RGCCATTCAAACCCGCCGCCCATCCA
    2MIB3324FCATTACCGAGCGATTCAACGAGC++726[19]
    MIB4050RCCGCAATCTGTAGCACCATGTTGA
    3MIBS-RTFCGCTCGCTTGTGAGTGAGATAG未检测[19]
    MIBS-RTRGGCAGTAGAGTGGTGAGGCAGTT
    4MIBFGACCCAKMTCGGCTGYTGAT++389本研究
    MIBRTAGAAGCTGTCGTGCTGKCG
      注:“+”表示PCR结果为阳性,琼脂糖凝胶电泳检测结果有条带;“−”表示PCR结果为阴性,琼脂糖凝胶电泳检测结果无条带。
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    表 2  MIBF/MIBR NCBI比对结果

    Table 2.  NCBI blast result of MIBF/MIBR

    序号NCBI登记号基因名藻种拉丁名藻种中文名MIBF/%MIBR/%
    1HQ830028.12-methylisoborneol (2-MIB) synthesis complete sequencePseudanabaena sp.伪鱼腥藻属100100
    2HQ630883.1MIB synthase genePseudanabaena limnetica湖泊伪鱼腥藻100100
    3AB826230.1pgmtc gene for monoterpene cyclasePseudanabaena galeata 洋伪鱼腥藻100100
    4HQ630887.1MIB synthase genePseudanabaena sp.伪鱼腥藻属100100
    5LC486303.1micMicrocoleus pseudautumnalis微鞘藻属100100
    6HQ630885.1MIB synthase geneOscillatoria limosa泥生颤藻100100
    7HQ830029.12-methylisoborneol (2-MIB) synthesis associated operonPlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    8KP013063.1A2 MIB cyclase geneLeptolyngbya sp.瘦鞘丝藻属100100
    9LC157987.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    10LC157990.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    11LC157992.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    12LC157991.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    13LC157989.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    14LC157988.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    15LC157986.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    16KJ658377.12-methylisoborneol synthase geneOscillatoria sp.颤藻属100100
    17KJ658378.12-methylisoborneol synthase genePlanktothrix sp.浮丝藻属100100
    18MN167115.1MIB synthase genePseudanabaena galeata洋伪鱼腥藻100100
    19MK759878.12-methylisoborneol (mib) gene, partial cdsOscillatoria prolifera颤藻00
    20KM013398.1A2 MIB cyclase (mic) gene, partial cdsLeptolyngbya sp.瘦鞘丝藻属00
    21KM013397.1MIB cyclase (mic) gene, partial cdsPlanktothricoides sp. 浮丝藻属00
    22KM013396.1MIB cyclase (mic) gene, partial cdsPlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻00
    23MK124613.1MIB synthase gene, partial cdsPseudanabaena sp.伪鱼腥藻属00
    序号NCBI登记号基因名藻种拉丁名藻种中文名MIBF/%MIBR/%
    1HQ830028.12-methylisoborneol (2-MIB) synthesis complete sequencePseudanabaena sp.伪鱼腥藻属100100
    2HQ630883.1MIB synthase genePseudanabaena limnetica湖泊伪鱼腥藻100100
    3AB826230.1pgmtc gene for monoterpene cyclasePseudanabaena galeata 洋伪鱼腥藻100100
    4HQ630887.1MIB synthase genePseudanabaena sp.伪鱼腥藻属100100
    5LC486303.1micMicrocoleus pseudautumnalis微鞘藻属100100
    6HQ630885.1MIB synthase geneOscillatoria limosa泥生颤藻100100
    7HQ830029.12-methylisoborneol (2-MIB) synthesis associated operonPlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    8KP013063.1A2 MIB cyclase geneLeptolyngbya sp.瘦鞘丝藻属100100
    9LC157987.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    10LC157990.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    11LC157992.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    12LC157991.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    13LC157989.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii 拉氏拟浮丝藻100100
    14LC157988.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    15LC157986.1MIB synthasePlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻100100
    16KJ658377.12-methylisoborneol synthase geneOscillatoria sp.颤藻属100100
    17KJ658378.12-methylisoborneol synthase genePlanktothrix sp.浮丝藻属100100
    18MN167115.1MIB synthase genePseudanabaena galeata洋伪鱼腥藻100100
    19MK759878.12-methylisoborneol (mib) gene, partial cdsOscillatoria prolifera颤藻00
    20KM013398.1A2 MIB cyclase (mic) gene, partial cdsLeptolyngbya sp.瘦鞘丝藻属00
    21KM013397.1MIB cyclase (mic) gene, partial cdsPlanktothricoides sp. 浮丝藻属00
    22KM013396.1MIB cyclase (mic) gene, partial cdsPlanktothricoides raciborskii拉氏拟浮丝藻00
    23MK124613.1MIB synthase gene, partial cdsPseudanabaena sp.伪鱼腥藻属00
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-12-31
  • 录用日期:  2019-05-08
  • 刊出日期:  2020-11-10
徐晓庆, 苏命, 朱宜平, 崔长征, MUHAMMAD Suruzzaman, 徐亚楠, 于建伟, 杨敏. 基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用[J]. 环境工程学报, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
引用本文: 徐晓庆, 苏命, 朱宜平, 崔长征, MUHAMMAD Suruzzaman, 徐亚楠, 于建伟, 杨敏. 基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用[J]. 环境工程学报, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
XU Xiaoqing, SU Ming, ZHU Yiping, CUI Changzheng, MUHAMMAD Suruzzaman undefined, XU Yanan, YU Jianwei, YANG Min. Evaluation of typical odorant 2-methylisoborneol based on real time qPCR in source water and its application[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184
Citation: XU Xiaoqing, SU Ming, ZHU Yiping, CUI Changzheng, MUHAMMAD Suruzzaman undefined, XU Yanan, YU Jianwei, YANG Min. Evaluation of typical odorant 2-methylisoborneol based on real time qPCR in source water and its application[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2020, 14(11): 3208-3215. doi: 10.12030/j.cjee.201912184

基于荧光定量PCR技术构建水源地典型致嗅物质2-甲基异莰醇的评估方法及其应用

    通讯作者: 崔长征(1978—),男,博士,副教授。研究方向:环境微生物利用等。E-mail:cuichangzheng@ecust.edu.cn
    作者简介: 徐晓庆(1994—),女,硕士研究生。研究方向:饮用水源地产嗅风险评估与调控。E-mail:lovelyyokyo@163.com
  • 1. 华东理工大学资源与环境工程学院,国家环境保护化工过程环境风险评价与控制重点实验室,上海 200237
  • 2. 中国科学院生态环境研究中心,环境水质学国家重点实验室,北京 100085
  • 3. 上海城投原水有限公司,上海 200125
基金项目:
国家水体污染控制与治理科技重大专项(2017ZX07108-002-02);国家自然科学基金资助项目(51878649)

摘要: 我国地表水源中由丝状蓝藻代谢产生2-甲基异莰醇(2-MIB)导致的嗅味问题十分普遍。由于传统显微镜检测方法无法鉴别产嗅藻种,不能满足水源水质管理要求,故有必要构建能特异性表征水体产嗅潜力的检测方法。由于丝状藻代谢产生2-MIB主要受其合成功能基因调控,设计了2-MIB功能基因引物,经引物特异性检验及PCR条件优化后,构建了基于2-MIB功能基因的定量PCR方法,并采用实际环境样品进行测试与验证。结果表明:引物特异性良好,定量PCR方法能有效检测2-MIB功能基因,并绘制了标准曲线,得出检测限为8.44×102 copies·L−1;实际样品测试结果显示其2-MIB功能基因浓度在2.09×107~1.94×1010 copies·L−1范围内,与基于仪器分析方法测定的2-MIB浓度符合线性关系(R2=0.63,P<0.01),表明定量方法可行。该方法具有灵敏性高、特异性好的特点,能特异性检测产嗅基因,可应用于水源地中产嗅潜力评估与预警。

English Abstract

  • 湖库是我国许多城市的重要饮用水水源地[1]。然而,我国35个城市水源水库中有80%的水体存在饮用水嗅味问题[2],其中由致嗅化合物2-甲基异莰醇(2-methylisoborneol,2-MIB)导致的水体土霉味问题居多[3-7]。由于该物质嗅阈值极低[5](4~16 ng·L−1),且很难通过常规水处理工艺去除[8],饮用水中残留的痕量2-MIB物质容易引发消费者对水质的担忧,威胁城市供水安全[4]。水源地嗅味问题已经成为我国供水行业中重点关注的问题之一[9]

    2-MIB主要由丝状蓝藻生长代谢产生,这类蓝藻包括颤藻属(Oscillatoria)、席藻属(Phormidium)、浮颤藻属(Planktothrix)以及伪鱼腥藻属(Pseudanabaena)等[9]。丝状蓝藻导致的2-MIB嗅味问题可最早追溯到1983年,由于水源水库底泥附着生长的颤藻引发美国加利福尼亚州3个供水系统出现嗅味问题[10];1991年,MARTIN等[11]在密西西比某池塘中采集到一株产2-MIB的颤藻;1998年,日本学者SUGIURA等[12]在Kasumigaura湖中分离出4株丝状产嗅蓝藻,包括2株席藻、1株颤藻和1株鞘丝藻,发现这些藻种生物量与水体土霉味之间存在正相关关系。

    近10年来,我国关于水源地嗅味问题的报道越来越多。北京密云水库每年9—10月局部区域出现浮颤藻生长导致水体嗅味问题[7];上海市新建水源地青草沙水库由于丝状蓝藻爆发导致季节性嗅味问题[13];天津于桥水库、苏州东太湖湖滨水库、上海金泽水库及银川某化工园区水源水库等均存在由于不同种属的丝状产嗅蓝藻生长或爆发导致的嗅味问题[14]

    大部分水源地中2-MIB由丝状蓝藻产生,由于丝状蓝藻种类较多、形态相近,不同藻种具有不同的产2-MIB特征,甚至同一藻种在不同外部环境条件下也存在产嗅差异。传统方法主要依托显微镜镜检通过藻细胞形态进行藻种计数。然而,从细胞形态上无法区分产嗅丝状藻种与非产嗅丝状藻种,因此,无法特异性检测水体中的产嗅藻;此外显微镜镜检前处理耗时长,检测效率低,准确度与精确度较低[7]。致嗅物质2-MIB可基于气相色谱-质谱联用(GC-MS)方法[15]分析,但因仪器昂贵、操作要求高、运行维护成本高,大部分水源管理机构不具备该条件,且该方法只能测定水样中已产生的2-MIB物质浓度,无法提前预警,也不能鉴别产生来源。因此,有必要构建一种能特异性检测水体2-MIB产生潜力的方法。

    由于丝状藻代谢产生2-MIB受相关功能基因控制,可通过实时荧光定量PCR(real-time quantitative polymerase chain reaction, qPCR)方法构建特异性检测2-MIB合成功能基因的方法。关于2-MIB的合成途径最初在放线菌中被发现[16],主要由SCO7701基因与SCO7700基因调控;随后,GIGLIO等[17]发现蓝藻中2-MIB的生物合成机制为GPP的甲基化和甲基GPP的环化反应,分别由GPPMT基因和2-MIBS基因调控。根据序列相似性分析,蓝藻和放线菌的2-MIB相关基因具有相对较高的相似度和同源性[18]

    本研究通过设计针对蓝藻中2-MIB功能基因的特异性引物,构建实时定量PCR方法,并采用实际水体检验方法的可行性,实现水源中丝状蓝藻的致嗅功能基因定量检测,进而评估水体产嗅潜力与产嗅风险,为水源嗅味问题的监测与预警提供实时、快速、科学的方法。

  • 所用藻种均为产2-MIB蓝藻,分别为FACHB-1277(Pseudanabaena sp., 伪鱼腥藻)、FACHB-1375(Planktothrix sp., 浮颤藻),购自中国科学院淡水藻种库。藻类培养使用BG11培养基,扩大培养后用于DNA提取及致嗅物质检测等目的。

  • 取500 mL藻培养液将藻细胞过滤富集至1.2 μm滤膜(RTTP04700,1.2 µm 聚碳酸酯膜,IsoporeTM, 美国)上;随后将滤膜剪切破碎后使用FastDNA ®SPIN Kit for Soil 试剂盒(6560-200,MPBio,美国)提取样品DNA。

  • 采用已有研究[19]中的2-MIB引物(MIB3313F/MIB4226R和MIB3324F/MIB4050R)可以有效扩增FACHB-1277与FACHB-1375样品中2-MIB功能基因,验证了实验藻种含MIB功能基因。但由于两对引物所扩增得到的2-MIB基因片段较长,分别为913 bp与726 bp,不能用于定量PCR扩增。进一步检验了已有研究中报道的定量PCR引物MIBS-RTF/ MIBS-RTR[19],发现不能扩增本研究中实验藻种的2-MIB功能基因。因此,本研究基于NCBI已公开的2-MIB功能基因数据库,设计2-MIB功能基因的特异性引物(表1),基因引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。将所设计的引物与NCBI中已有2-MIB基因数据库比对验证引物可行性与特异性;并采用普通PCR法测试相关引物,使用1.2 %琼脂糖凝胶电泳方法检验了引物的特异性。

  • 普通PCR反应体系为:2×PCR Taq MasterMix with dye (RR005A,TAKARA Bio公司,日本)12.5 μL,上下游引物各0.8 μL,模板DNA 2.0 μL,ddH2O 8.9 μL。普通PCR扩增程序为:高保真酶活化阶段95 ℃,持续5 min;高温变性阶段95 ℃,持续30 s;低温退火阶段64 ℃,持续 45 s;延伸阶段72 ℃,持续30 s;高温变性、低温退火、延伸阶段共45个循环。

    qPCR反应体系为:TB GreenTM Premix Ex TaqTM (RR820,TAKARA Bio公司,日本)12.5 μL,上下游引物MIBF/MIBR各0.5 μL,模板DNA 2.0 μL,ddH2O 9.5 μL。qPCR扩增程序为:高温变性95 ℃,持续10 s;低温退火64 ℃,持续20 s;延伸阶段72 ℃,持续30 s;反应共40个循环;另外,溶解曲线设置条件为由65 ℃升温至97 ℃,速率为2.2 ℃·s−1

  • 基于引物MIBF与MIBR扩增FACHB-1277 DNA模板,经测序后根据序列信息合成2-MIB功能基因质粒,浓度为359 ng·μL−1(由生工生物工程(上海)股份有限公司合成)。根据式(1)计算质粒拷贝数。

    式中:N为基因拷贝数浓度,copies·μL−1NA为阿伏伽德罗常数;c为核酸质量浓度,ng·μL−1L为碱基长度,bp;MW为单位碱基平均摩尔质量。

    由式(1)计算得到质粒拷贝数为8.44×1011copies·μL−1。按10倍进行梯度稀释,得到7个浓度水平,以此为DNA模板,按照1.4节提及的优化体系与运行参数进行qPCR扩增。同一浓度梯度质粒DNA为模板的反应孔作3组平行实验,将得到的Cq值与2-MIB基因量的对数构建线性模型,绘制标准曲线。

  • 配制了9个不同浓度产嗅藻的培养样品,包括FACHB-1277伪鱼腥藻-1 (S01)、FACHB-1277伪鱼腥藻-2 (S02)、FACHB-1277伪鱼腥藻-3 (S03)、FACHB-1375浮颤藻-1 (S04)、FACHB-1375浮颤藻-2 (S05)、FACHB-1375浮颤藻-3 (S06)、青草沙分离的Pseudanabaena sp. 01 (S10)、青草沙分离的Pseudanabaena sp. 02 (S11)、青草沙分离的Pseudanabaena sp. 03 (S12)。采集了12个南水北调工程的环境样品,包括S07~S09、S13~S21。对这21组样品分别进行了定量PCR方法检测与气相色谱-质谱联用的2-MIB物质浓度分析[15, 20-22],每个样品重复分析3次。

  • 实验测试了已有研究[19]的2-MIB基因相关引物,发现MIB3313F/MIB4226R、MIB3324F/MIB4050R两对引物能有效扩增模拟培养藻种FACHB-1277与FACHB-1375。然而,目标基因片段过长,因此,无法用于定量PCR扩增。已有研究[19]的引物不能有效扩增本实验的藻种,这与2-MIB功能基因序列具有一定的可变性有关。因此,采用MIB3313F/MIB4226R引物扩增了FACHB-1277 DNA,并通过测序获得2-MIB功能基因序列,序列NCBI登记号为MN869917。基于该序列信息设计了MIBF/MIBR引物(见表1)。经测试发现,这对引物能有效扩增2-MIB功能基因,PCR产物长度为389 bp,可用于qPCR方法。MIBF/MIBR NCBI比对结果见表2

    为验证MIBF/MIBR引物的可行性,比对了引物序列与NCBI基因数据库中所有蓝藻中MIB合成功能基因结果,发现这对引物能匹配18条MIB功能基因序列(截至目前发表了23条)。由结果分析可知:不能匹配的基因序列(19~23)是由于这些序列仅为部分MIB基因序列,未包含MIBF/MIBR引物段序列;而这对引物仅能匹配NCBI中已发表的MIB功能基因。进一步采用实际藻种进行普通PCR扩增实验,产物条带介于250 bp至500 bp之间,验证了MIBF/MIBR引物的可行性,结果如图1所示。

  • 将1.5节合成的2-MIB功能基因质粒(拷贝数8.44×1011copies·μL−1)作为标准品进行定量PCR测试,基于结果构建循环次数Cq值与2-MIB基因拷贝数的对数构建线性模型,绘制标准曲线如图2所示。标准曲线公式见式(2)。

    式中:Cq为循环次数;Cg为2-MIB基因丰度,copies·L−1图2表明两者符合线性关系(R2=0.999 5,P<0.01),检测限为8.44×102 copies·L−1,说明该方法能满足2-MIB功能基因检测要求。

  • 图3为12个环境水体及9个不同浓度产嗅藻的培养样品的测试结果。由图3可知,该方法能够检测出环境水体及培养样品中的2-MIB功能基因,得到的环境样品浓度为2.09×107 ~1.94×1010 copies·L−1。其中,实验室培养的FACHB-1375 Planktothrix sp.浮颤藻样品2-MIB功能基因丰度最高,实际环境样品中2-MIB功能基因丰度水平相近,最低为于桥水库样品,相应基因丰度为2.09×107 copies·L−1。此外,各水样3组重复样品检测结果十分接近,表明该方法的重现性较好。

  • 为验证方法的可靠性,用GC-MS方法检测了上述21个样品中2-MIB浓度[7]。对比分析2种方法的结果发现其符合线性关系(R2=0.63,P<0.01),表明定量PCR方法可以表征水体中2-MIB浓度(见图4)。式(3)为2-MIB浓度与功能基因之间的定量关系模型,可用于利用定量PCR结果评估水体中2-MIB浓度水平。

    式中:Cg为2-MIB基因丰度,copies·L−1c为2-MIB浓度,ng·L−1

  • 水源地中藻类生长产生的嗅味问题已成为供水行业最为关注的问题。在我国,由于丝状蓝藻生长代谢2-MIB导致的水体土霉味问题尤为普遍,确认2-MIB的产生来源能提升水源地嗅味管理及防控水平。实时荧光定量PCR(qPCR)对基因定量的检测方法已广泛应用于检测蓝藻或有毒蓝藻总量中。该方法具有快速高效、灵敏度高、检出限低、特异性好和高重复性高等优点。目前,已有少量基于qPCR方法的检测水体中产土臭素(geosmin)微生物生物总量的方法[23],但是用于含2-MIB功能基因微生物生物总量的检测应用还较少。

    本研究中构建的定量PCR方法,能直接定量检测水体中的2-MIB功能基因,避免了传统方法基于形态学无法区分产嗅藻与非产嗅藻的缺陷。相比于采用气相色谱-质谱联用(GC-MS)的仪器分析方法,定量PCR方法能同时检测多达96个样品,具有通量高、速度快等特点。此外,该方法检测限低,能最低检测到8.44×102 copies·L−1个2-MIB功能基因拷贝数。该结果与基于定量PCR方法检测水体中土臭素功能基因的结果一致[7]

    然而,由于该方法存在一些缺陷,限制了其推广应用。大部分分子生物学方法是以目标生物DNA为主要研究对象,而蓝藻具有细胞壁,DNA的提取难度与误差增加。SU等[7]发现DNA提取是影响检测样品中土嗅素功能基因准确度的最主要步骤,与本研究的结论类似。DNA提取过程的不确定显著降低了结果的准确性。此外,由于产2-MIB的蓝藻并未完全界定,不同产2-MIB藻种的基因序列不完全相同,加上当前有关2-MIB的功能基因研究很少,NCBI中的MIB基因序列仍在不断完善中。因此,本研究中所设计的引物可能无法扩增之后新发现的产嗅藻2-MIB功能基因,正如以往引物不能有效扩增本研究涉及的产嗅藻种一样。随着DNA提取方法的不断改进,以及2-MIB功能基因库序列信息的完善,基于定量PCR的水源2-MIB风险评估方法具有广泛的应用前景。

    基于此,本课题组还将此方法应用于上海市、厦门市的水源水库中,旨在考察该方法是否能快速、有效地核算出水体的产嗅潜力,达到水体嗅味问题预警的要求,为水源地的水质管理提供十分重要的工具与技术支持。

  • 1)建立了检测水体中2-MIB功能基因的定量PCR方法,该方法能克服传统方法无法区分产嗅藻与非产嗅藻的缺点,且满足检测要求(R2=0.999 5,P<0.01)。

    2)通过采集我国不同地区的实际水源样品,对比验证了定量PCR方法与仪器分析方法结果的一致性(R2=0.63,P<0.01),说明本研究提出基于定量PCR评估水体嗅味风险的方法具有可行性。

    3)基于qPCR的产嗅基因丰度检测代替了繁琐、重现性低的显微镜看藻、数藻过程。快速、准确有效地检测水体中致嗅功能基因的丰度,能起到预警作用,为水源地的水质管理提供十分重要的工具与技术支持。

参考文献 (23)

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