一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水

赵良杰, 彭党聪, 吕恺, 王静. 一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水[J]. 环境工程学报, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
引用本文: 赵良杰, 彭党聪, 吕恺, 王静. 一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水[J]. 环境工程学报, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
ZHAO Liangjie, PENG Dangcong, LYU Kai, WANG Jing. Treatment of simulated medium and low-strength ammonia wastewater by single-stage partial nitritation-anammox process[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
Citation: ZHAO Liangjie, PENG Dangcong, LYU Kai, WANG Jing. Treatment of simulated medium and low-strength ammonia wastewater by single-stage partial nitritation-anammox process[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034

一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水

    作者简介: 赵良杰(1995—),女,硕士研究生。研究方向:污水处理理论与技术。E-mail:zlj119951247@163.com
    通讯作者: 彭党聪(1957—),男,硕士,教授。研究方向:污水处理理论与技术。E-mail:dcpeng@xauat.edu.cn
  • 基金项目:
    陕西省2019年重点研发计划(2019ZDLSF06-05)
  • 中图分类号: X703.1

Treatment of simulated medium and low-strength ammonia wastewater by single-stage partial nitritation-anammox process

    Corresponding author: PENG Dangcong, dcpeng@xauat.edu.cn
  • 摘要: 采用序批式反应器(sequencing batch reactor, SBR)研究了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度氨氮废水的运行稳定性。结果表明,在温度为35 ℃、进水氨氮浓度为200 mg·L−1、溶解氧为0.2~0.4 mg·L−1条件下,一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化反应器去除负荷(以TN计)可达到0.24 kg·(m3·d)−1,平均去除率为75.84%,成功实现了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化的稳定运行。污泥中氨氧化菌(ammonia oxidizing bacteria, AOB)和厌氧氨氧化菌(anaerobic ammonia oxidation, Anammox)活性(以NH+4-N计)分别稳定在877.24 mg·(g·d)−1和127.61 mg·(g·d)−1,亚硝酸氧化菌(nitrite oxidizing bacteria, NOB)活性由60.84 mg·(g·d)−1(以NO2-N计)下降至18.54 mg·(g·d)−1,NOB被成功抑制,AOB与Anammox菌之间形成良好的协同作用,保证了稳定的脱氮效果。FISH结果表明,污泥中的优势菌为AOB和Anammox菌,从微生物角度佐证了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化反应器维持较好脱氮效果的长期运行稳定性。一段式部分亚硝化厌氧氨氧化工艺的稳定运行可为厌氧氨氧化技术处理中低浓度氨氮废水提供参考。
  • 1,4-丁炔二醇(1,4-butynediol, BYD)是一种重要的化工原料,主要用于合成1,4-丁二醇(1,4-butanediol, BDO),进而生产四氢呋喃、聚四亚甲基乙二醇醚(PTMEG)、聚对苯二甲酸丁二醇酯(PBT)和聚丁二酸丁二醇酯(PBS)等重要化工产品[1-3]。目前,我国已经是世界上最大的BDO生产国[4],BDO生产首先利用乙炔和甲醛经铜铋催化合成BYD,BYD再经过精馏提浓,提浓后BYD需要通过阴阳离子树脂脱除含有的铜离子、二氧化硅和醋酸根离子等杂质,进而再催化加氢生成BDO[5]。其中,阴阳离子树脂再生产生的脱离子废液含有高浓度BYD残留[6],废水化学需氧量(chemical oxygen demand, COD)可达到6 000~20 000 mg·L−1,是BDO生产过程产生的主要高浓度有机废水,由于部分企业使用5%的硫酸进行阳离子树脂再生,从而导致该废水中硫酸盐含量也较高(6 000~10 000 mg·L−1)。BYD脱离子废液与生活污水、冲洗废水和BDO精馏废水等低浓浓度有机废水混合后即为BDO生产废水,BYD脱离子废液水量占BDO生产废水的比例为50%~70%。 BYD脱离子废液的高效低耗处理是BDO生产废水处理的关键。

    厌氧生物处理技术因为具有能耗低、可回收甲烷气和污泥产量少等优势,广泛应用于高浓度有机废水的预处理[7]。其利用水解产酸菌、互养产氢产乙酸菌和产甲烷菌的协作实现有机物的厌氧甲烷转化[8]。当废水中含有硫酸根离子时,硫酸盐还原菌(sulfate reducing bacteria,SRB)也会参与厌氧代谢过程,在低浓度硫酸盐含量条件下,SRB可以促进难降解有机物的降解和乙酸产生,进而促进甲烷代谢[9];当硫酸盐含量过高时,硫酸盐还原产生的过多硫化氢可以抑制产甲烷古菌和SRB,进而抑制厌氧有机物代谢[10]。考虑到BYD是BDO生产脱离子废液的主要COD贡献者,阐明其在不同厌氧处理条件下的生物降解效果,对于脱离子废液及其他高含BYD废水的处理工艺设计具有重要指导意义。

    目前关于BYD可生化性的研究较少,GOTVAJN[11]和TISLER等[12]利用快速生物降解实验方法评估了BYD的好氧可生化性,发现在60 d的培养周期内BYD浓度基本没有降低,认为BYD是一种不易生物降解有机物。陈庆磊等[13]利用批次实验评估了BDO生产废水的厌氧处理效果,发现COD去除率约为56%,没有研究BYD的去除率。且BYD分子中含有内炔烃超共轭结构,化学性质十分稳定[11],明确BYD厌氧可生化性对于指导工程实践具有积极意义。

    因此,本研究联合使用批次和连续实验方法评估了BYD在厌氧生化处理过程中的生物降解效果,同时测定了COD、BYD、硫酸盐浓度变化及微生物群落的演替情况,研究结果可为含BYD工业废水的处理提供指导。

    实验所用BYD购自上海麦克林生化科技股份有限公司(纯度98%),为白色斜方结晶,用纯水配成50 000 mg·L−1储备液,4 ℃保存。厌氧生化实验的外加微量元素营养液组成为[14]:MgCl2 (30 mg·L−1)、NiCl2 (10 mg·L−1)、CoCl2 (10 mg·L−1)、FeCl2 (40 mg·L−1)、CaCl2 (20 mg·L−1)、ZnSO4 (20 mg·L−1)、MnSO4 (20 mg·L−1)。CaCl2等常规化学试剂均为分析纯,购自天津市科密欧化学试剂有限公司。

    本实验所用厌氧颗粒污泥为安徽宿州某酒精厂污水处理站的厌氧颗粒污泥,外形为规则球形,颗粒直径为0.5~4.0 mm;活性污泥采自河北石家庄市某市政污水处理厂缺氧池污泥,絮状,沉降性能优良。

    厌氧批次实验在AMPTS® II自动甲烷潜力测试系统(BPC Instruments AB)中进行。为探究BYD是否可在纯厌氧产甲烷体系降解、复配活性污泥和SO42−还原是否可促进BYD厌氧降解,厌氧批次实验一共设置了3组实验,每组2个平行,同时设置没有厌氧污泥接种的空白组。实验组污泥浓度均控制在15 000 mg·L−1,pH=7.1,具体物料组成见表1,硫酸盐组控制BYD/SO42− =0.299 (对应COD/SO42− 的质量比为0.5)。各组实验均加入1 mL微量元素溶液,反应总体积均为400 mL,利用恒温水浴控制反应温度稳定在37 ℃。

    表 1  厌氧批次实验设计
    Table 1.  Design of anaerobic batch experiments mg·L−1
    实验组别 接种污泥 BYD 碱度(以CaCO3计) NH4Cl KH2PO4 K2HPO4 SO42−
    颗粒污泥组 厌氧颗粒污泥 500 1 000 140 30 30
    污泥复配组 厌氧颗粒污泥与活性污泥复配a 500 1 000 140 30 30
    外加硫酸盐组 厌氧颗粒污泥与活性污泥复配a 500 1 000 140 30 30 1 670
      注:厌氧颗粒污泥与活性污泥浓度比为2:1。
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    厌氧连续实验在2套平行中温有效容积为6.3 L的UASB反应器进行,种泥为30%活性污泥与70%厌氧颗粒污泥复配污泥。进水水质模拟内蒙古某BDO生产企业的实际BYD脱离子废液水质配置(表2),进水COD由葡萄糖和BYD组成,氮源为氨氮,磷源为磷酸二氢钠,碱度由碳酸氢钠贡献,微量元素(Fe、Mn、Zn、Co)添加参考KONG等[10],进水pH调至7.2±0.2,进水基质桶水温由低温水浴控制在4 ℃。反应器各阶段具体运行参数见表2

    表 2  厌氧UASB反应器不同阶段的运行参数
    Table 2.  Operating parameters of anaerobic UASB reactors at different stages
    阶段 HRT(d) 有机负荷(以COD计) COD/SO42−(质量比) BYD(mg·L−1) 葡萄糖(mg·L−1) TCOD(mg·L−1) SO42−(mg·L−1)
    S1 10 0.5 4 686 5 000
    S2 10 1 2 980 4 686 10 000
    S3 10 1 10 2 980 4 686 10 000 1 000
    S4 10 1 5 2 980 4 686 10 000 2 000
    S5 10 1 1 2 980 4 686 10 000 10 000
    S6
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    厌氧发酵气体首先通过二氧化碳吸收瓶(含有3 M的氢氧化钠),之后利用湿式气体流量计记录每日产气量。污水样品经0.22 μm滤膜过滤后,滤液用于各指标测试,其中COD和SO42−测定参照水质测定标准[15]。针对硫酸盐还原体系,滤液首先经过曝气去除溶液中的硫化物,通过硫化物测定试纸(陆恒生物)不变蓝判断硫化物被完全去除,之后再过滤测定COD。采用GC-FID (岛津GC2010 plus)测定BYD浓度,选用SH-Stabilwax-DA柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm) 作为气相色谱柱,温度程序如下:100 ℃保留1 min,以20 ℃·min−1升温至120 ℃,保留4 min,之后以20 ℃·min−1升温至220 ℃,保留5 min。进样口和检测器温度分别为240 ℃和260 ℃。氦气作载气,初始压力为400 kPa。采用外标法测定BYD含量,每次测试新配置标准曲线。采用内标法测定挥发性脂肪酸(VFAs)含量,取1mL滤液加入1-丁醇内标(2 000 mg·L−1)后,使用GC-FID (岛津GC2010 plus)测定VFAs浓度,选用Restek Stabilwax-DA柱(30 m×0.53 mm×0.1 μm) 作为气相色谱柱,温度程序如下:70 ℃保留1 min,以20 ℃·min−1升至150 ℃,之后以4 ℃·min−1升至 160 ℃,再以20 ℃·min−1升至210 ℃,保留2 min。进样口和检测器温度分别为240 ℃和260 ℃。氦气作载气,初始压力为167.3 kPa。

    针对UASB反应器,在每个运行阶段结束时分别从2个平行反应器中收集厌氧污泥样品,使用FastDNATM SPIN Kit (MP Biomedicals, Solon, USA)试剂盒提取DNA,使用NanoDrop分光光度计(ND-2000, NanoDrop Technologies, USA)测定DNA浓度和纯度。提取后DNA使用515F (GTGCCAGCMGCCGCGG)和907R (CCGTCAATTCMTTTRAGTTT)引物扩增细菌16S rRNA基因[16],PCR扩增产物送至上海美吉生物医药科技有限公司进行NovaSeq PE250测序。测序数据存储于NCBI SRA (链接号:PRJNA1108964)。测序数据质控、OUT (operational taxonomic units)聚类、细菌菌属注释和主坐标分析(PCoA)通过美吉生物云平台(https://cloud.majorbio.com/)完成。

    图1(a)所示,空白组中BYD不会因为水解、挥发等原因而浓度下降。在单一厌氧颗粒污泥接种的实验组,BYD降解缓慢,31 d实验结束时去除率仅为40.72%,对应的降解速率为6.6 mg·(L·d)−1 (图1(b)),且COD去除与BYD降解表现出较高的一致性(相关系数R2=0.908,P<0.05)。KONG等[17]报道活性污泥与厌氧颗粒污泥的复配可以提高N-N-二甲基甲酰胺的厌氧产甲烷效果,发现N-N-二甲基甲酰胺首先被活性污泥中兼性厌氧水解微生物转化为二甲胺和一甲胺等中间体,再被产甲烷古菌直接利用,从而促进了N-N-二甲基甲酰胺的完全厌氧降解。厌氧颗粒污泥与活性污泥复配有可能也会促进BYD的厌氧降解,因此开展了2种污泥复配的BYD降解实验,结果如图1(c)所示。复配活性污泥后,BYD的降解速率加快,达到9.9 mg·(L·d)−1,在31 d实验结束时BYD的去除率达到了65.71%,较单一厌氧颗粒污泥实验组提升了25.01%。但是需要指出,实验结束时污泥复配体系的COD去除率仅为29.43%,与单一颗粒污泥体系(33.02%)基本一致。将实验结束时残留BYD浓度转化为COD理论值为281.2 mg·L−1,小于COD实测值(658.5 mg·L−1),表明虽然活性污泥接种带入的BYD兼性厌氧水解菌可以将BYD转化为未知有机中间产物,使得其母体物质浓度降低速度加快,但生成的中间产物仍难以被产甲烷古菌降解。除了产甲烷古菌,在硫酸盐含量较高的厌氧体系中,SRB可以利用乳酸、丙酸和醇类等多种有机物作为电子供体[18],SO42−为电子受体,将有机物降解并将SO42−还原成硫化氢[19]

    图 1  批次实验中3种厌氧生化条件下BYD的降解情况
    Figure 1.  Degradation of BYD in three anaerobic digestion systems

    考虑到BYD分子中含有羟基,有可能作为SRB的电子供体而被降解。因此,在复配污泥作为种泥的条件下进一步加入硫酸盐,探究硫酸盐还原是否可以加速BYD的厌氧降解。结果如图1 (d)所示,加入硫酸盐后,复配污泥中BYD降解速率进一步提升至11.2 mg·(L·d)−1,在31 d实验结束后去除率达到79.46%,比单一厌氧颗粒污泥和复配污泥实验组的BYD去除率分别提高了38.74%和13.75%。同时,COD的最终去除率达到52.03%,比单一厌氧颗粒污泥和复配污泥实验组分别提高了19.01%和22.60%。混合液SO42−的质量浓度变化与BYD和COD的质量浓度变化都表现出显著的正相关关系(P<0.05) (图1 (d))。实验开始后(0~6 d),SO42−质量浓度即快速降低(图1 (d)),表明反应起始硫酸盐还原作用即占据主导,这可能与本研究中采用的低COD/SO42− (0.5)有关。HAO等[20]报道COD/SO42−低于1.5时,SRB会获得生长优势,厌氧代谢以硫酸盐还原为主。在反应结束时,SO42−去除率为57.32%,对应的单位硫酸盐去除所需的COD比例为0.5,低于与WU等之前报道的乙醇和醋酸盐合成废水单位硫酸盐去除所需的COD比例(0.6)[21]。将实验结束时混合液残留BYD的质量浓度转化为理论COD值为171.6 mg·L−1,同样小于实测COD值441 mg·L−1,说明外加硫酸盐虽然提高了BYD的降解,但是体系中仍有部分BYD的厌氧转化产物难以被SRB利用。

    1)反应器运行效果。短期批次实验可以初步评估目标污染物的厌氧降解性能,而长期连续实验可以进一步解析厌氧微生物群落经过长期驯化后对目标污染物的生物降解效果(这与实际废水处理系统运行状况更相似),2种方法的结合可以更全面地解析目标污染物的厌氧降解性能[7]。本研究中,批次实验结果表明BYD在厌氧产甲烷体系中降解较慢,厌氧颗粒污泥复配活性污泥和外加硫酸盐均可以加速BYD的厌氧降解。为此,进一步参考实际BDO生产脱离子废液水质(COD为6 000~20 000 mg·L−1,SO42−含量为6 000~10 000 mg·L−1),建立了2套平行的UASB反应器评估了长期运行情况下BYD的厌氧降解效果,结果如图2所示。UASB反应器一共运行了388 d,根据进水水质变化分为S1~S6 6个阶段(表2)。

    图 2  不同进水条件下UASB运行效果
    Figure 2.  Performance of UASBs at different stages

    UASB反应器以葡萄糖为唯一碳源启动,运行20 d之后出水COD值低于120 mg·L−1,VFAs低于30 mg·L−1 (图2(b)和图2(d)) (S1阶段),证明厌氧污泥活性优良。在第21天,反应器进水加入2 980 mg·L−1的BYD (S2阶段),此后反应器出水COD值和BYD质量浓度逐渐上升,在52 d分别稳定在约5 000 mg·L−1和2 965 mg·L−1,对应的COD和BYD去除率仅约50.33%和0.50% (图2(a)~(b)),且在此过程中CH4产率未出现下降(图2 (e)),VFAs未累积(图2(d))。在第83天,反应器出水VFAs和COD值急剧上升,在105 d VFAs达到了1 780 mg·L−1,主要由乙酸组成(图2(d)),同时出水COD也上升到了9 365 mg·L−1 (图2(b)),COD去除率下降至6.37%,UASB出现了VFAs累积现象。考虑到BYD分子中含有—C≡C—和—OH等结构,易于与金属离子络合[22],当其质量浓度过高时(如本文的2 980 mg·L−1)可络合带走过多铁、钴、镍等微量金属元素,导致可用于产甲烷古菌维持正常生命活动的微量金属元素含量降低,从而导致厌氧产甲烷微生物失活。随后在111 d将进水中微量元素质量浓度翻倍,反应器出水VFAs和COD值随即快速下降,系统产气恢复(图2 (e))。之后继续对UASB反应器进行了42 d的连续监测,系统再未出现抑制情况,但BYD去除率也没有进一步提升,表明即使经过长期驯化厌氧产甲烷微生物代谢体系中BYD降解速率仍较低。

    此后,向反应器引入硫酸盐共运行了3个阶段(S3~S5),通过提高进水硫酸盐质量浓度使各阶段COD/SO42−分别为10、5和1。在S3阶段(167~215 d),进水COD/SO42− =10的情况下,UASB反应器CH4产率从0.89 L·d−1提升至1.07 L·d−1,表明少量硫酸盐加入提高了厌氧甲烷产率。同时,该阶段COD去除率为50.56%,SO42−去除率为97.15%,出水BYD质量浓度先下降后上升,最终稳定在2 847 mg·L−1,对应去除率为3.92% (图2 (a)、(b))。

    在S4阶段(216~260 d),将COD/SO42−降低至5,CH4产率从1.07 L·d−1迅速降低至0.41 L·d−1,而VFAs未发生累积(图2(d)),BYD去除率略提升至4.83%,COD去除率为51.02%,SO42−去除率93.81%。上述结果说明此阶段厌氧生化系统仍然能保持正常运行,但硫酸盐还原作用已经显著增强,开始与产甲烷代谢共同承担对乙酸的降解。

    在S5阶段(263~369 d),进一步将进水COD/SO42−下调到1,出水BYD质量浓度明显降低,去除率从S4阶段的4.83%提高到21.92% (图2(a))。但同时,厌氧生物系统迅速受到抑制,COD去除率从51.02%下降至20.31%,SO42−去除率从93.81%下降至24.48%,并且VFAs (主要为乙酸)快速累积至2 824 mg·L−1 (图2 (d)),这可能是由于在COD/SO42− =1的条件下,硫酸盐还原已经成为主导的厌氧有机物降解途径[23],但是进水SO42−质量浓度过高,导致产生的硫化氢质量浓度超过了SRB和产甲烷古菌的耐受阈值,从而抑制了乙酸的进一步转化。O'FLAHERTY等[10]曾报道游离硫化氢对厌氧微生物的抑制阈值为38~185 mg·L−1,而本研究S5阶段UASB反应器内理论游离硫化氢质量浓度已经超过214.7 mg·L−1 (约占总硫化物8.82%)[19],厌氧微生物活性可被完全抑制。在第370天采取停止进水的方式试图恢复厌氧系统活性(S6阶段),在18 d的恢复期内,反应器内BYD、COD、SO42−和VFAs均有下降趋势,但下降趋势较慢。

    2)微生物群落演替。利用高通量测序技术分析了UASB连续实验过程中厌氧污泥细菌群落的演替情况。如图3所示,BYD的投加(S2)显著改变了污泥中厌氧微生物群落结构,硫酸盐的投加(S3~S6)进一步显著改变了UASB厌氧系统微生物群落的结构,而在S3~S6阶段COD/SO42−的改变及停止进水过程中细菌群落结构相对稳定。

    图 3  UASB反应器不同阶段下细菌群落结构的β多样性分析(PCoA分析,OTU水平)
    Figure 3.  PCoA analysis of bacterial communities at OUT level in UASBs at different stages

    门水平下细菌群落变化如图4所示,种泥(S1阶段)细菌以绿弯菌门(Chloroflexi)、厚壁菌门(Firmicutes)、变形菌门(Proteobacteria)、拟杆菌门(Bacteroidota)、热孢菌门(Thermotogae)、互养菌门(Synergistota)和螺旋体门(Spirochaetota)为主,其中部分Proteobacteria和Spirochaetota细菌具有硫酸盐还原功能[24]。投加BYD后(S2阶段),Firmicutes、Proteobacteria和Spirochaetota相对丰度分别从18.13%、9.17%和0.71%增加到32.68%、15.53%和5.67%,而Chloroflexi门丰度从21.63%减少至7.44%。进水增加硫酸盐后,在S3阶段脱硫杆菌门(Desulfobacterota)、Spirochaetota和Cloacimonadota门细菌相对丰度分别由1.09%、5.67%和0.27%增加至4.53%、14.98%和11.35%,其中Cloacimonadota门细菌通常存在于厌氧发酵系统中,宏基因组组装基因组分析揭示其是一种潜在的乙酸产生菌[25],而多种Desulfobacterota门细菌(如Syntrophobacter、Desulfoglaeba和Desulfovibrio)同时是丙酸氧化产乙酸菌和SRB,在高COD/SO42−条件下可获得更大的生存优势,成为产甲烷古菌的主要互养微生物[20, 26-28]。随着COD/SO42−降低至5(S4阶段),厌氧系统硫酸盐还原作用被进一步加强(图2 (e)),Desulfobacterota和Proteobacteria相对丰度分别从4.53%和6.45%上升到12.64%和9.75%,而Cloacimonadota和Spirochaetota相对丰度略有降低。在S5与S6阶段,Firmicutes与Chloroflexi相对丰度分别从29.08%和7.33%减少至16.04%和2.18%,Bacteroidota和Synergistota相对丰度分别从8.30%和5.07%提升至16.88%和10.49%,而Desulfobacterota和Proteobacteria丰度基本不变(图4)。

    图 4  不同运行阶段UASB污泥细菌群落组成(门水平)
    Figure 4.  Changes in bacterial communities at phylum level in UASB at different stages

    考虑到硫酸盐还原作用可以增强BYD的厌氧降解,进一步在属水平上分析了实验过程中UASB内SRB的变化(图5)。本研究共检出属于5个门64个属的SRB,其中丰度较高的22个SRB在种泥中的总丰度为2.76%,优势SRB菌为互营杆菌属(Syntrophobacter) (0.76%)、史密斯氏菌属(Smithella) (0.60%)和脱硫弧菌属(Desulfovibrio) (0.41%)。S2阶段引入BYD后,厌氧污泥中SRB种类未变,但总丰度明显减少(1.17%) (图5)。进入S3阶段(进水COD/SO42− =10),DesulfovibrioSyntrophobacterSmithella快速生长,相对丰度分别从0.05%、0.11%和0.22%增加至1.46%、0.86%和1.42%。这3个菌属均属于Desulfobacterota[28],其中SyntrophobacterSmithella为互养产乙酸菌,其可利用硫酸盐作为电子受体氧化丙酸等多种有机物,生成乙酸和二氧化碳[29],从而为产甲烷古菌提供更多的甲烷前驱物,促进甲烷代谢。而Desulfovibrio为不完全氧化型SRB[30],在COD/SO42−≥10的条件下,同样可利用硫酸盐作为电子受体氧化乳酸、丙酸等有机物生成乙酸,从而提高了乙酸产量,促进甲烷代谢[21, 29]

    图 5  不同运行阶段UASB污泥中硫酸盐还原菌在属水平上的丰度变化
    Figure 5.  Change in the abundances of sulfate reducing bacteria at Genus level in bacterial communities at different stages of UASBs

    上述3个菌属的富集可能是S3阶段观测到甲烷产率提升的原因(图2(e))。在S4阶段COD/SO42−进一步降低到5后,SRB总丰度增加至12.6%,DesulforhabdusDesulfovibrio取代SyntrophobacterSmithella成为优势SRB。其中,Desulforhabdus丰度由S3阶段的0.04%显著提升至4.42%,其是一种完全氧化型SRB,可利用硫酸盐作为电子受体完全氧化乙酸等有机物生成二氧化碳和硫化物[29, 31-32],进而减少了可用于甲烷代谢的乙酸量。因此,完全氧化型SRB与产甲烷古菌对乙酸的竞争应该是S4阶段UASB反应器甲烷产率明显下降(图2(e))的主要原因。

    进入S5阶段,虽然SRB总丰度有所降低,但是Desulforhabdus的相对丰度进一步增加至5.19%,说明在低COD/SO42−条件下完全氧化型SRB会获得生存优势。Desulforhabdus的进一步富集,一方面会使更多的乙酸用于硫酸盐还原,从而进一步减少甲烷产生;另一方面,在高硫酸盐存在下,完全氧化型硫酸盐还原产生的过多硫化氢会同时抑制产甲烷古菌和SRB(包括Desulforhabdus)[10],这就导致了在S5阶段基本无甲烷产生(图2(e)),VFAs (特别是乙酸)显著累积(图2(d)),同时硫酸盐去除有限(图2(c))。需要指出,尽管S5阶段硫酸盐还原作用被显著抑制,BYD的降解仍得到显著提升(图2(a)),同时BYD的降解效率提升与Desulforhabdus丰度增加有一定相关性(图2(a)和图5),说明完全氧化型SRB (Desulforhabdus)可能是BYD的潜在降解菌。MOTTERAN等[33]曾报道Desulforhabdus参与了直链烷基苯磺酸盐这类难降解有机物的厌氧降解,且硫酸盐浓度会影响其降解效果。除Desulforhabdus外,部分水解产酸菌(如Caldicoprobacter, Anaerofustis, Lachnoclostridium, Thiobacillus)和互养产酸菌(Thermovirga)的丰度变化与BYD的降解效果同样表现出显著正相关性(Spearman相关,P<0.05)。后续研究需结合纯菌筛选和降解实验以进一步确认BYD的厌氧降解菌。

    在S6阶段,另一种不完全氧化型SRB (Desulfocurvus)[34-35]丰度显著增加(图5)。COLIN等[36]同样在含高浓度乙酸盐的河口沉积物(厌氧环境)中检测到高丰度的Desulfocurvus。这可能是因为虽然Desulfocurvus主要利用硫酸盐作为电子受体氧化乳酸或丙酮酸等有机物生成乙酸,但是在H2含量高的厌氧环境其可以利用乙酸作为碳源生长[34],而S6阶段高浓度乙酸残留(图2 (d))和相对高H2含量(DesulfovibrioSyntrophobacterSmithella等SRB的代谢产氢)的环境有利于其增殖。

    本研究表明对于含BYD的废水采用厌氧UASB处理时,厌氧接种污泥最好采用复配污泥;对于含有BYD同时COD和SO42−含量较高的废水(例如BDO生产过程产生的脱离子废液),厌氧UASB工艺可考虑利用硫酸盐还原提升废水的有机质去除效果,但是需要考虑游离硫化氢抑制问题:高强度硫酸盐还原,会产生大量硫化物,同时生成大量游离硫化氢,其会进入细胞,对产甲烷古菌和SRB产生抑制[23, 37],从而导致厌氧有机物去除效率下降(图2)。为了防止游离硫化氢的抑制,一方面可以通过稀释,降低进水硫酸盐质量浓度,比如HU等[23]研究发现在COD/SO42− =1的情况下,降低进水SO42−质量浓度至3 000 mg·L−1,可以保证80%的SO42−被还原去除;另一方面李健等[38]针对UASB反应器,设计出水循环系统和硫化物吹脱塔,即厌氧出水通过泵打入吹脱塔,吹脱塔中布置曝气装置,利用空气曝气将废水中硫化物氧化为硫单质从而降低废水中游离硫化氢含量,吹脱后液体通过泵打回到进水端,与进水混合后进入厌氧塔,从而缓解塔内游离硫化氢的抑制。利用上述措施,李健等[38]实现了高有机硫、高COD制药废水的稳定厌氧处理。最后,高质量浓度BYD本身可以络合金属离子,硫酸盐还原产生的硫化物也可以沉淀金属离子,因此通过硫酸盐还原处理高含BYD废水时,需要注意补加更多的微量元素。

    1)单纯的厌氧产甲烷体系中BYD的降解较慢,活性污泥和厌氧颗粒污泥复配及添加SO42−均可以提升厌氧生化对BYD的降解速率。

    2)高质量浓度BYD会络合过多铁、钴、镍等微量金属元素,导致产甲烷古菌被抑制,厌氧系统VFAs显著累积,通过补加微量元素的方式可以解除抑制。

    3)随着进水COD/SO42−降低,硫酸盐还原逐渐替代甲烷代谢成为主要的厌氧代谢途径,同时BYD的厌氧降解率也逐渐升高;在进水COD/SO42−为1时BYD的降解率达到21.92%,完全氧化型硫酸盐还原菌Desulforhabdus成为优势菌属,但此时因为游离硫化氢大量产生,同时抑制了产甲烷古菌和硫酸盐还原菌,使得厌氧体系乙酸大量累积,即使停止进水厌氧系统在短时间内也很难恢复。

    4)后续研究需要进一步考察不同质量浓度BYD对厌氧微生物群落的影响,并设计实验评估低COD/SO42−情况下,进水硫酸盐质量浓度对硫酸盐还原降解BYD的影响。此外,还需考察非生物转化途径(如吸附作用)对BYD在厌氧生化系统去除的贡献。

  • 图 1  反应器运行效果

    Figure 1.  Performance of reactor

    图 2  典型周期内DO、pH、氮素和FA浓度变化

    Figure 2.  Variations of DO, pH, nitrogen and FA concentrations during a typical cycle

    图 3  反应器中污泥浓度的变化

    Figure 3.  Variations of sludge concentration in the reactor

    图 4  反应器中AOB、NOB及Anammox活性变化

    Figure 4.  Variations in activities of AOB, NOB and Anammox in the reactor

    图 5  反应器中AOB、NOB及Anammox FISH图

    Figure 5.  FISH pictures of AOB, NOB and Anammox bacteria in reactor

    表 1  荧光原位杂交所用的探针

    Table 1.  Probes used in FISH test

    探针名称RNA序列(5'~3')标记细菌种属来源
    Eub338GCTGCCTCCCGTAGGAGTEubacteria[25-26]
    Eub338ⅡGCAGCCACCCGTAGGTGTEubacteria[25-26]
    Eub338ⅢGCTGCCACCCGTAGGTGTEubacteria[25-26]
    Nso1225CGCCATTGTATTACGTGTGABetaproteobacterial ammonia-oxidizing bacteria[27]
    NmVTCCTCAGAGACTACGCGGNitrosococcus mobilis[28]
    Cluster6a 192CTTTCGATCCCCTACTTTCCNitrosomonas oligotropha lineage[29]
    Ntspa662GGAATTCCGCGCTCCTCTGenus Nitrospira[30]
    Nit3CCTGTGCTCCATGCTCCGGenus Nitrobacter[31]
    Nsm156TATTAGCACATCTTTCGATNitrosomonas[27]
    Nsv443CCGTGACCGTTTCGTTCCGNitroso-spira, -lobus, -vibrio[27]
    AMX368CCT TTC GGG CAT TGG GAAAll anammox bacteria[32]
    探针名称RNA序列(5'~3')标记细菌种属来源
    Eub338GCTGCCTCCCGTAGGAGTEubacteria[25-26]
    Eub338ⅡGCAGCCACCCGTAGGTGTEubacteria[25-26]
    Eub338ⅢGCTGCCACCCGTAGGTGTEubacteria[25-26]
    Nso1225CGCCATTGTATTACGTGTGABetaproteobacterial ammonia-oxidizing bacteria[27]
    NmVTCCTCAGAGACTACGCGGNitrosococcus mobilis[28]
    Cluster6a 192CTTTCGATCCCCTACTTTCCNitrosomonas oligotropha lineage[29]
    Ntspa662GGAATTCCGCGCTCCTCTGenus Nitrospira[30]
    Nit3CCTGTGCTCCATGCTCCGGenus Nitrobacter[31]
    Nsm156TATTAGCACATCTTTCGATNitrosomonas[27]
    Nsv443CCGTGACCGTTTCGTTCCGNitroso-spira, -lobus, -vibrio[27]
    AMX368CCT TTC GGG CAT TGG GAAAll anammox bacteria[32]
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图( 5) 表( 1)
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-04-07
  • 录用日期:  2020-05-30
  • 刊出日期:  2021-01-10
赵良杰, 彭党聪, 吕恺, 王静. 一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水[J]. 环境工程学报, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
引用本文: 赵良杰, 彭党聪, 吕恺, 王静. 一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水[J]. 环境工程学报, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
ZHAO Liangjie, PENG Dangcong, LYU Kai, WANG Jing. Treatment of simulated medium and low-strength ammonia wastewater by single-stage partial nitritation-anammox process[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034
Citation: ZHAO Liangjie, PENG Dangcong, LYU Kai, WANG Jing. Treatment of simulated medium and low-strength ammonia wastewater by single-stage partial nitritation-anammox process[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2021, 15(1): 143-151. doi: 10.12030/j.cjee.202004034

一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度模拟氨氮废水

    通讯作者: 彭党聪(1957—),男,硕士,教授。研究方向:污水处理理论与技术。E-mail:dcpeng@xauat.edu.cn
    作者简介: 赵良杰(1995—),女,硕士研究生。研究方向:污水处理理论与技术。E-mail:zlj119951247@163.com
  • 1. 西安建筑科技大学环境与市政工程学院,西安 710055
  • 2. 西北水资源与环境生态教育部重点实验室,西安 710055
  • 3. 中国市政工程设计院华北设计研究总院有限公司西安分公司,西安 710016
基金项目:
陕西省2019年重点研发计划(2019ZDLSF06-05)

摘要: 采用序批式反应器(sequencing batch reactor, SBR)研究了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺处理中低浓度氨氮废水的运行稳定性。结果表明,在温度为35 ℃、进水氨氮浓度为200 mg·L−1、溶解氧为0.2~0.4 mg·L−1条件下,一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化反应器去除负荷(以TN计)可达到0.24 kg·(m3·d)−1,平均去除率为75.84%,成功实现了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化的稳定运行。污泥中氨氧化菌(ammonia oxidizing bacteria, AOB)和厌氧氨氧化菌(anaerobic ammonia oxidation, Anammox)活性(以NH+4-N计)分别稳定在877.24 mg·(g·d)−1和127.61 mg·(g·d)−1,亚硝酸氧化菌(nitrite oxidizing bacteria, NOB)活性由60.84 mg·(g·d)−1(以NO2-N计)下降至18.54 mg·(g·d)−1,NOB被成功抑制,AOB与Anammox菌之间形成良好的协同作用,保证了稳定的脱氮效果。FISH结果表明,污泥中的优势菌为AOB和Anammox菌,从微生物角度佐证了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化反应器维持较好脱氮效果的长期运行稳定性。一段式部分亚硝化厌氧氨氧化工艺的稳定运行可为厌氧氨氧化技术处理中低浓度氨氮废水提供参考。

English Abstract

  • 厌氧氨氧化(anaerobic ammonia oxidation, Anammox)是指在缺氧条件下,Anammox菌利用NO2-N氧化NH+4-N,最终生成N2和少量NO3-N的过程[1-2]。一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺是将氨氮的亚硝化和厌氧氨氧化集成在一个反应器中,从而一步实现氨氮的高效去除。与传统硝化反硝化工艺相比,一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺具有无需消耗有机碳源、节省60%的曝气量和污泥产率低等显著优势[3-5]

    目前,该工艺已成功用于处理高氨氮废水,如污泥消化液、垃圾渗滤液及畜牧业废水等[6-8]。截至2014年,全球已有100座以厌氧氨氧化工艺运行的污水处理工程,其中,88%采用一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化[9]。一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化稳定运行的关键在于维持反应器中氨氧化菌(ammonia oxidizing bacteria, AOB)和Anammox菌优势生长,同时抑制亚硝酸氧化菌(nitrite oxidizing bacteria, NOB)[10-11]。现有研究表明,在高氨氮环境下,通过控制溶解氧(dissolved oxygen, DO)、pH、游离氨(free ammonia, FA)、游离亚硝酸(free nitrite acid, FNA)和污泥龄[12-16]等均可实现抑制或者淘汰NOB,从而达到高氨废水的高效稳定脱氮。然而,在中低浓度(无厌氧消化的城市污水处理厂污泥水及部分工业废水)条件下,FA或FNA的浓度较低,对NOB的抑制作用减弱甚至消失。而有研究[17]发现,仅通过低溶解氧很难实现对NOB的长期抑制。MIAO等[18]在研究一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化处理中低浓度氨氮废水时发现,在低溶解氧(0.17±0.08) mg·L−1条件下,出水NO3-N浓度快速上升,TN去除率下降至14.7%,这表明低溶解氧并未有效抑制NOB。因此,探究在中低浓度下一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺的稳定运行具有重要意义。

    本研究采用序批式反应器(sequencing batch reactor, SBR),通过控制溶解氧浓度(0.2~0.4 mg·L−1),以间歇曝气的方式启动并连续运行一段式亚硝化-厌氧氨氧化,对反应器的脱氮性能进行了分析评价,同时测定了AOB、NOB和Anammox的活性变化,并采用荧光原位杂交 (fluorescent in situ hybridization, FISH)对污泥中功能微生物的群落结构进行了分析,以期为一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化提供理论基础和潜在的技术支持。

  • SBR有效容积为5 L,水力停留时间(hydraulic retention time, HRT)为15 h,运行期间不排泥。反应器采用PLC控制系统实现自动控制,设定运行周期为6 h,其中进水10 min、反应时间300 min(曝气30 min(好氧)、搅拌45 min(缺氧),依次循环往复)、沉淀30 min、排水10 min、闲置10 min。反应温度为(35±1) ℃,DO控制在0.2~0.4 mg·L−1,pH维持在7.5~8.0。外部用锡箔纸包裹进行避光处理。

  • 实验用水采用人工配制,其成分为200 mg·L−1 NH+4-N (NH4Cl)、1000~2000 mg·L−1 KHCO3、180 mg·L−1 CaCl2·2H2O、100 mg·L−1 MgSO4·7H2O、50 mg·L−1 KH2PO4、微量元素Ⅰ和微量元素Ⅱ各1 mL·L−1。微量元素Ⅰ组分为5 g·L−1 EDTA、9.14 g·L−1 FeSO4·7H2O;微量元素Ⅱ组分为0.43 g·L−1 ZnSO4·7H2O、0.24 g·L−1 CoCl·6H2O、0.99 g·L−1 MnCl2·4H2O、0.25 g·L−1 CuSO4·5H2O、0.22 g·L−1 NaMoO4·2H2O、0.19 g·L−1 NiCl2·6H2O、0.21 g·L−1 NaSeO4·10H2O、0.014 g·L−1 H3BO3[19-21]

  • 亚硝化阶段反应器接种污泥取自实验室稳定运行的亚硝化反应器,接种量为1.2 g·L−1,AOB活性(以NH+4-N计,下同)为1 258.62 mg·(g·d)−1,NOB活性(以NO2-N计,下同)281.02 mg·(g·d)−1。通过溶解氧和FA的双重抑制实现亚硝化反应器的稳定运行,在亚硝化反应器出水NO2-N与NH+4-N浓度之比接近1时,接种厌氧氨氧化污泥启动一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化,反应器运行参数维持不变。Anammox接种污泥取自以SBR方式稳定运行的厌氧氨氧化反应器,Anammox活性(以NH+4-N计,下同)为315.25 mg·(g·d)−1,该污泥颗粒化程度良好,外观呈红棕色,接种量为1.72 g·L−1,接种后的污泥浓度为2.92 g·L−1

  • 实验中各项常规水质指标测定按标准方法进行[22]NH+4-N的测定采用纳氏试剂分光光度法,NO2-N的测定采用N-(1-萘基)-乙二胺分光光度法,NO3-N的测定采用紫外分光光度法。pH由在线式pH计(Inpro 4010,梅特勒)测定。DO由在线式溶氧仪(Inpro 6050,梅特勒)测定。MLSS和MLVSS均采用重量法。

    游离氨(FA)和游离亚硝酸(FNA)值[23]按照式(1)和式(2)进行计算。

    式中:CFA为游离氨浓度,mg·L−1CFNA为游离亚硝酸浓度,mg·L−1Ct,NH3为总氨氮浓度,mg·L−1Ct,NO2总亚硝酸盐浓度,mg·L−1T为温度,℃。

  • 1)硝化活性测定。从反应器中取400 mL泥水混合液,经去离子水淘洗后分别置于2个500 mL广口瓶中,分别加入NH4Cl (NH+4-N为40 mg·L−1)、NaNO2(NO2-N为30 mg·L−1),随后用去离子水定容至400 mL,并在35 ℃条件下充分曝入空气,每间隔10 min从广口瓶中取样分别测定NH+4-N和NO2-N的浓度,取样结束后,分别测量MLVSS并计算AOB和NOB的活性。

    2)厌氧氨氧化活性测定。从反应器中取400 mL泥水混合液,经去离子水淘洗后,置于500 mL广口瓶中,同时加入基质NH4Cl、NaNO2和微量元素(NH+4-N浓度为30 mg·L−1NO2-N为40 mg·L−1),然后使用去离子水定容至400 mL,在35 ℃条件下采用高纯氮气进行曝气以维持缺氧环境,每间隔20 min取样测定NH+4-N的浓度,pH控制在7.5~8.3,取样结束后,测量MLVSS并计算Anammox的活性。

  • Anammox菌和硝化菌的荧光原位杂交参照AMANN等[24]描述方法进行。杂交后的污泥样品通过激光共聚焦显微镜(TCS SP8, 莱卡)进行观察,并在100倍物镜下采集图像。实验所用探针如表1所示。

  • 反应器连续运行110 d,运行效果见图1。在亚硝化运行阶段(0~44 d),通过控制DO和FA浓度实现了AOB的富集和NOB的抑制,从而获得较大的氨氧化速率和较高的亚硝酸盐积累率。在反应器运行初期(1~13 d),出水NH+4-N浓度较高,对应的FA浓度高达10 mg·L−1以上,此阶段内不仅NOB被完全抑制(FA阈值为1.0 mg·L−1),AOB也被部分抑制(FA阈值10 mg·L−1)[23];随着运行时间的延长,AOB逐渐适应,出水NH+4-N浓度逐渐降低,NO2-N浓度逐渐增高,到第18 天时,出水氨氮浓度已经降至101.30 mg·L−1NO2-N浓度达到83.23 mg·L−1,出水NO2-N与NH+4-N浓度之比为0.82,亚硝酸盐积累率达到86%,其后出水NO2-N与NH+4-N浓度之比稳定在0.8~1.03。在此期间,出水FA平均浓度为4.40 mg·L−1,大于NOB抑制阈值(1 mg·L−1)[23],反应器内溶解氧浓度为0.2~0.4 mg·L−1,由于AOB对氧的亲和力大于NOB,溶解氧优先被AOB利用[33-34],表明此阶段NOB受到DO和FA的双重抑制作用。反应器出水的pH维持在7.5~8.0,即使在NO2-N浓度为98.87 mg·L−1的情况下,FNA的浓度也小于NOB的抑制浓度(0.023 mg·L−1)[35],这说明采用FNA抑制NOB的策略只有在高氨废水时才有可能实现。

    当反应器接种厌氧氨氧化菌转入一段式亚硝化-厌氧氨氧化方式运行后(45~110 d),在曝气阶段,AOB可正常工作进行亚硝化;在停止供氧后,Anammox菌利用亚硝化产生亚硝酸,对氨进行氧化。因此,出水NO2-N浓度迅速降低,而NO3-N浓度在增加,这说明亚硝化和厌氧氨氧化协同作用发生。随着运行时间的延长,污泥中的AOB活性逐渐增加,出水NH+4-N浓度也逐渐降低。到70 d时,出水NH+4-N为26.81 mg·L−1NO2-N浓度在1 mg·L−1以下,NO3-N浓度为24.10 mg·L−1,反应器氨氮去除率和TN去除率分别达到86.60%和73.75%,其后反应器出水维持稳定,直至运行结束。在进入该反应阶段后,由于进行了Anammox反应,出水NH+4-N浓度的降低使得出水中FA浓度相应降低,但FA浓度处于抑制NOB的阈值范围内,因此,NOB会受到FA的抑制作用,使系统中的Anammox菌能稳定利用AOB转化的亚硝酸盐进行Anammox反应,为一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器的稳定运行和获得较好的脱氮效果奠定了基础。韩志勇等[36]通过控制曝气时间和曝气量,采用MBR研究了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化处理氨氮废水的运行特性,在进水氨氮浓度为200 mg·L−1条件下,氨氮和TN去除率分别为88.91%和58.87%。而本研究采用SBR反应器在低溶解氧条件下,获得较高的AOB和Anammox活性(图2),成功实现了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化的稳定运行,从而获得较好的脱氮效果。

  • 图2为一段式亚硝化-厌氧氨氧化阶段典型周期内DO、pH、氮素及FA浓度的变化。由图2可见,在进水结束后,由于进水中含有一定量的DO,首个好氧段的DO浓度可达0.6 mg·L−1以上,随着反应的进行,DO浓度快速下降并趋于稳定,而其余好氧段的DO浓度始终维持在0.2~0.4 mg·L−1,为亚硝化创造了良好的条件。在好氧段,氨氧化菌工作,NH+4-N被氧化为NO2-N,导致NH+4-N下降和NO2-N增加;在随后的缺氧段,Anammox菌开始工作,利用好氧段产生的NO2-N氧化NH+4-N,导致NH+4-N和NO2-N浓度同时减少;其后循环往复,直至反应结束,此时,NH+4-N浓度由周期起始时的95.76 mg·L−1降低到27.06 mg·L−1NO2-N浓度在1 mg·L−1以下。由于好氧段部分NO2-N被NOB氧化为NO3-N和缺氧段厌氧氨氧化反应产生部分NO3-N,导致整个周期内NO3-N浓度持续上升,由周期起始最低时的20.76 mg·L−1增加到周期结束时的28.28 mg·L−1。在整个周期内,混合液中的FA浓度大于1 mg·L−1,大于FA对NOB的抑制阈值,从而使得NOB被部分抑制。在周期内DO和FA的浓度变化结果说明本反应器的操作达到了DO和FA对NOB的双重抑制,通过间歇曝气在SBR中实现了一段式亚硝化-厌氧氨氧化脱氮。

    值得注意的是,在好氧段NH+4-N浓度平均下降了约10 mg·L−1,而NO2-N浓度平均增加了5.61 mg·L−1NO3-N浓度增加了不到1 mg·L−1,约40%的氮在好氧段损失(被Anammox菌转化为氮气),氮平衡计算结果间接表明,在好氧段发生了同步亚硝化-厌氧氨氧化过程。这一结果说明在连续曝气(低DO)的条件下,同样可实现一段式亚硝化-厌氧氨氧化。

  • 图3图4分别为反应器运行期间污泥浓度和各功能微生物活性变化。由图3可知,污泥浓度基本维持稳定,在亚硝化阶段污泥浓度维持稳定在1.2 g·L−1左右,接种厌氧氨氧化污泥后,污泥浓度稳定在2.8 g·L−1。由图4可知,在亚硝化阶段,AOB活性逐渐升高,由1 258.62 mg·(g·d)−1升至1 842.80 mg·(g·d)−1,而NOB活性由于受到溶解氧和FA的双重抑制而稳定在281.02~330.03 mg·(g·d)−1。在此阶段,AOB活性快速上升而NOB活性维持稳定,上述结果表明,反应器在成功富集培养AOB的同时,也有效抑制了NOB,从而实现了亚硝酸盐的稳定积累。

    接种厌氧氨氧化污泥后,污泥浓度的增加,污泥中AOB和NOB所占份额下降而导致AOB和NOB的活性分别下降至526.13 mg·(g·d)−1和60.84 mg·(g·d)−1。由图4可知,随着反应器的运行,AOB活性总体呈现升高的趋势,最终活性达到815 mg·(g·d)−1。而此阶段NOB受到DO和FA的双重抑制,在与Anammox菌竞争NO2-N时处于劣势,这使得NOB活性始终处于较低水平并呈下降趋势,最低下降至18.54 mg·(g·d)−1。Anammox活性在接种后略有下降,这主要是由于Anammox菌未适应好氧/缺氧交替环境,在运行一段时间后,Anammox活性开始恢复并缓慢增加,其平均和最大活性分别为113.09 mg·(g·d)−1和127.61 mg·(g·d)−1。由此可见,AOB和Anammox菌在反应器中优势生长,反应器内微生物之间形成良好的协同作用,系统具有良好的运行稳定性和较好的脱氮效果。李军等[37]采用间歇曝气模式启动一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器处理中低浓度废水,在稳定运行后,AOB和Anammox活性分别为403 mg·(g·d)−1和221 mg·(g·d)−1。MIAO等[38]研究认为,AOB活性是一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化在间歇曝气模式下稳定运行的关键因素,Anammox活性随着AOB活性的增加而增加,反应器的脱氮效果也随之上升。本研究中AOB和Anammox活性逐渐上升,NOB活性逐渐下降,AOB和Anammox活性远大于NOB,更有利于一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器的长期稳定运行。

  • 反应器中AOB、NOB及Anammox的FISH图像如图5所示。由图5可见,在亚硝化阶段,AOB所占份额较高,而基本检测不出NOB。这表明在亚硝化阶段通过低溶解氧和FA的双重抑制成功富集AOB的同时也达到了抑制NOB的目的,实现了亚硝化的稳定运行。在一段式亚硝化-厌氧氨氧化阶段中,AOB和Anammox菌所占份额明显高于NOB,这说明此阶段AOB和Anammox菌为反应器中的优势菌,从微生物角度表明一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器可实现良好的脱氮效果和长期运行稳定性。

  • 1)在温度为35 ℃、进水NH+4-N浓度为200 mg·L−1、DO浓度为0.2~0.4 mg·L−1条件下,一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器处理负荷(以TN计)可达到0.24 kg·(m3·d)−1,TN平均去除率为75.84%,成功实现了一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化的稳定运行。

    2)反应器内AOB和Anammox菌形成良好的协同作用并有效抑制NOB,一段式部分亚硝化-厌氧氨氧化具有较好的运行稳定性。

    3)一段式亚硝化-厌氧氨氧化反应器的成功启动并稳定运行,为Anammox技术处理中低浓度氨氮废水提供了参考。

参考文献 (38)

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