厌氧氨氧化工艺氮去除负荷高、无需外加有机碳源、污泥产量低、运行成本低，但因厌氧氨氧化菌生长速度慢、倍增时间长，且对环境条件变化较为敏感，使得厌氧氨氧化工艺启动耗时较长，这极大地限制了厌氧氨氧化技术的工程应用^[1]。Dokhaven污水厂的厌氧氨氧化(anaerobic ammonia oxidation，ANAMMOX)工艺耗时3.5 a成功启动^[2]。因此，厌氧氨氧化菌(anaerobic ammonia oxidizing bacteria，AnAOB)的高效富集、ANAMMOX工艺的快速启动及稳定运行引起研究者的广泛关注。

ANAMMOX工艺的快速启动与接种污泥性质、反应器类型密切相关^[3]。不同类型的好氧、厌氧污泥均可用于ANAMMOX工艺启动。好氧污泥虽菌群丰富，但其所含厌氧菌属较少，启动期会相应较长；厌氧反硝化污泥中含有的反硝化菌与AnAOB同属厌氧菌，可省去好氧转向厌氧环境时的污泥适应阶段，完成AnAOB的富集，可缩短工艺启动市场，但其沉降性能较差，启动过程中易出现污泥流失^[4]；而经厌氧消化后的剩余污泥具有良好沉降性能，且来源广泛、易于获取，污泥碳氮比含量低、高氨氮适应性强、厌氧菌含量高且与AnAOB的代谢基质相近，较适合作为ANAMMOX工艺启动的接种污泥。反应器类型直接影响污泥固体停留时间(solid retention time，SRT)、水流上升流速等，进而影响AnAOB富集、工艺启动速度、工艺运行稳定性等；序批式反应器(sequencing batch reactor，SBR)、序批式生物膜反应器(sequencing batch biofilm reactor，SBBR)、膜生物反应器(membrane bioreactor，MBR)、生物滤池均可成功启动ANAMMOX工艺^[5-7]。上流式厌氧污泥床(upflow anaerobic sludge blanket，UASB)反应器作为第2代厌氧反应器的杰出代表，具有较好的污泥持留能力和基质传质效果，可为AnAOB的生长提供良好的环境，其在ANAMMOX工艺运行中的优势已逐步显现。WANG等^[8]将厌氧氨氧化颗粒污泥接种于UASB反应器(22 L)，经过178 d启动及稳定运行，氮容积负荷(nitrogen loading rate，NLR)和氮去除负荷(nitrogen removal rate，NRR)可高达8.25 kg ·(m³·d)⁻¹(以N计)和6.93 kg·(m³·d)⁻¹(以N计)。

因此，本研究以厌氧消化污泥为接种污泥，以UASB反应器为反应装置启动ANAMMMOX工艺，研究了ANAMMOX-UASB反应器启动过程的生物特性，考察了ANAMMOX- UASB启动运行过程中的污泥表观形态、脱氢酶及胞外聚合物的变化，分析了启动过程中胞外聚合物结构、组成的特征，解析了功能菌群动态演替规律，以期探明ANAMMOX-UASB启动过程中的生物特性，为厌氧氨氧化工艺的快速启动与工程应用提供参考。

1.   材料与方法

1.1   实验装置

所采用的实验装置如图1所示，UASB反应器呈圆柱结构，由有机玻璃制成，总容积为3.5 L，有效容积为1.4 L，其中反应区内径6 cm，高度50 cm。模拟废水由蠕动泵从UASB反应器底部连续泵入，从下至上依次经反应区、沉淀区后，最后经出水口排出；产生的气体经顶部排气孔排出。反应区部分采用黑布包裹以避免光照对AnAOB产生的不利影响。反应器工作温度为(35±1) ℃。

图 1  实验装置示意图

Figure 1.  Schematic diagram of experimental equipment

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1.2   接种污泥

实验中所用接种污泥取自青岛市某污水处理厂厌氧消化罐，污泥形态呈黑褐色絮状。混合液悬浮固体质量浓度(mixed liquid suspended solids，MLSS)约为47.39 g·L⁻¹，混合液挥发性悬浮固体质量浓度(mixed liquor volatile suspended solids，MLVSS)约为22.77 g·L⁻¹，MLVSS/MLSS为0.48。接种污泥量为1.2 L。

1.3   实验废水

实验废水采用人工模拟废水，${\rm{N}}{{\rm{H}}_4^ +}$-N和${\rm{N}}{{\rm{O}}_2^ -}$-N分别由NH₄Cl和NaNO₂按需配置，其他主要成分为27 mg·L⁻¹ KH₂PO₄、500 mg·L⁻¹ NaHCO₃、180 mg·L⁻¹ CaCl₂·2H₂O、300 mg·L⁻¹ MgSO₄·7H₂O。微量元素Ⅰ、Ⅱ添加量均为1 mL·L⁻¹。微量元素Ⅰ的组成成分及含量为5 mg·L⁻¹ EDTA、5 mg·L⁻¹ FeSO₄·7H₂O、微量元素Ⅱ为15 mg·L⁻¹ EDTA、0.99 mg·L⁻¹ MnCl₂·4H₂O、0.25 mg·L⁻¹ CuSO₄·5H₂O、0.43 mg·L⁻¹ ZnSO₄·7H₂O、0.014 mg·L⁻¹ H₃BO₄、0.19 mg·L⁻¹ NiCl₂·6H₂O、0.22 mg·L⁻¹ Na₂MoO₄·2H₂O。废水pH为7.5~7.8。

1.4   分析测定方法

${\rm{N}}{{\rm{H}}_4^ +}$-N采用纳氏试剂分光光度法测定；${\rm{N}}{{\rm{O}}_2^ -}$-N采用N-(1-萘基)乙二胺分光光度法测定；${\rm{N}}{{\rm{O}}_3^ -}$-N采用紫外分光光度法测定；pH采用玻璃电极法测定；SS和VSS采用重量法^[9]测定。脱氢酶(dehydrogenase activity，DHA)的提取与测定采用TTC还原法^[10]。胞外聚合物(extracellular polymeric substance，EPS)提取与测定参照WANG等^[11]的方法分层提取松散型胞外聚合物(loosely bound EPS，LB-EPS)与紧密型胞外聚合物(tightly bound EPS，TB-EPS)。采用硫酸-蒽酮比色法^[12]测定多糖(polysaccharide，PS)含量，采用改进的Folin-酚试剂法^[13]测定蛋白质(protein，PN)的含量。

三维荧光光谱(three-dimensional excitation-emission matrix fluorescence spectroscopy，3D-EEM)采用荧光光度计(F-4 600, Hitachi, Japan)测定样品中LB-EPS和TB-EPS的三维荧光光谱^[14]。激发波长(Ex)和发射波长(Em)分别为200~450 nm和240~550 nm，扫描间隔为5 nm，扫描速度采用1 200 nm·min⁻¹。用超纯水作为空白样品校正水的拉曼散射。实验数据采用Origin绘图分析。

聚合酶链式反应(polymerase chain reaction，PCR)及高通量测序：采用Power Soil DNA Isolation Kit按照操作步骤提取样品中DNA，使用1%(质量分数)的琼脂糖凝胶电泳检测DNA浓度和质量。采用细菌16S rRNA基因V3+V4扩增区域，引物为341F(CCTACGGGNGGCWGCAG)和805R(GACTACHVGGGTATCTAATCC)，对DNA进行PCR扩增，扩增体系及扩增条件按彭广生等^[15]方法进行。PCR扩增产物使用OMEGA胶回收纯化试剂盒纯化后4 ℃保存。样本交由北京诺禾致源生物信息科技有限公司进行DNA提取和测序。利用Illumina HiSeq高通量测序技术在HiSeq 2500系统进行测序。

2.   结果与讨论

ANAMMOX-UASB反应器启动过程共持续250 d，整个过程分为菌体水解期(阶段Ⅰ)、活性迟滞期(阶段Ⅱ)、活性提高期(阶段Ⅲ)和稳定运行期(阶段Ⅳ和阶段Ⅴ)^[16]。启动过程运行情况见表1。

表 1  ANAMMOX-UASB启动过程中各阶段运行情况

Table 1.  Performance of each stage during ANAMMOX-UASB startup process

阶段	运行时间/d	HRT/h	进水N质量浓度/(mg·L−1)			出水N质量浓度/(mg·L−1)			TN去除率/%
			${\rm{N}}{{\rm{H}}_4^ +}{\text{-N}}$	${\rm{N}}{{\rm{O}}_2^ -} {\text{-N}}$		${\rm{N}}{{\rm{H}}_4^ +} {\text{-N}}$	${\rm{N}}{{\rm{O}}_2^ -}{\text{-N}}$	${\rm{N}}{{\rm{O}}_3^ -}{\text{-N}}$
Ⅰ	1~13	24	50	50		152.36±85.15	1.22±1.16	4.07±1.76	−57.65±84.85
Ⅱ	14~53	24	50	50		4.68±7.92	7.91±6.31	3.4±1.73	84.19±10.6
Ⅲ	54~123	24	50~300	50~300		0.17±0.40	0.37±0.42	14.71±18.2	96.6±2.75
Ⅳ	124~160	24~12	300	300		1.86±2.62	0.83±0.77	56.21±0.77	90.18±2.49
Ⅴ	161~250	12~6	300	300		8.55±7.24	3.22±2.02	67.54±6.9	86.78±1.72

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2.1   污泥表观形态

ANAMMOX-UASB反应器接种污泥为絮状黑褐色厌氧消化污泥(图2(a))。随着启动运行，污泥内有机物不断消耗、异养菌逐渐死亡，导致反应器污泥层高度逐渐下降。第53天，絮状污泥颜色逐渐转变为黄褐色，且部分区域污泥呈现团聚体状。自第100天起，反应器内出现小颗粒状污泥，且部分已呈现浅红色(图2(b))，结合此过程反应器脱氮性能可断定厌氧氨氧化反应已明显显现。此时，反应器内的污泥与郑平等^[17]报导的厌氧氨氧化颗粒污泥形状一致，说明絮状污泥逐渐颗粒化，厌氧氨氧化污泥初步形成。颗粒污泥呈现红色是由于厌氧氨氧化菌体内含有丰富的细胞色素c，污泥发红程度可以反映厌氧氨氧化菌的富集程度，可以作为肉眼判断厌氧氨氧化活性的依据^[18]。随着ANAMMOX-UASB反应器继续运行，絮状污泥颗粒化进一步加强，至第250天时，反应器内以不规则状的红色颗粒污泥和褐色絮状污泥为主(图2(c))，此时NRR维持在2 kg·(m³·d)⁻¹左右，厌氧氨氧化菌已成功富集。

图 2  ANAMMOX-UASB启动过程的污泥表观形态

Figure 2.  Sludge apparent morphology during ANAMMOX-UASB startup process

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2.2   脱氢酶(DHA)活性

脱氢酶主要参与微生物降解有机物的过程^[10]，也可以参与某些细胞的合成。一氧化碳脱氢酶是乙酰辅酶A途径的关键酶。尽管厌氧氨氧化菌不以有机物为碳源，但仍有脱氢酶活性。ANAMMOX-UASB反应器启动过程中脱氢酶活性变化，可以反映出厌氧氨氧化工艺启动过程中污泥中异养菌的消长情况，结果见图3。由图3可知，因接种污泥为厌氧消化污泥，其异养微生物丰度较高，脱氢酶活性为3 909.51 μg·(h·g)⁻¹(以TF计)。在第53天，污泥的脱氢酶活性降低至2 788.809 μg·(h·g)⁻¹，这主要是由内源有机物量降低，异养微生物逐步衰亡、自溶等造成。随着启动过程的继续(53~250 d)，厌氧氨氧化菌丰度逐步增加，异养菌含量进一步降低，脱氢酶活性大幅度降低，最终降至72.13 μg·(h·g)⁻¹。LIN等^[19]利用厌氧氨氧化污泥作为接种污泥启动厌氧氨氧化工艺时，启动前脱氢酶活性为684 μg·(h·g)⁻¹，成功启动后脱氢酶活性降为252 μg·(h·g)⁻¹。KIM等^[20]的研究表明，异养菌脱氢酶参与了有机化合物的同化和异化反应，自养菌的脱氢酶主要参与有机化合物的同化，异养菌的脱氢酶活性远高于自养菌脱氢酶。在厌氧氨氧化工艺启动中，因进水基质无有机物，污泥中异养菌大量裂解死亡，导致脱氢酶活性大幅下降；厌氧氨氧化菌虽然不利用有机物进行分解代谢，但仍以CO₂作为无机碳源，通过乙酰辅酶A途径合成自身细胞物质，故工艺在成功启动后仍具有一定的脱氢酶活性。

图 3  ANAMMOX-UASB启动过程中的脱氢酶变化

Figure 3.  Change in DHA activity during ANAMMOX-UASB startup process

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2.3   胞外聚合物(EPS)

1) EPS含量。EPS是厌氧氨氧化污泥的重要组成部分，厌氧氨氧化细菌会嵌入到由细胞和EPS组成的聚集体中^[21]。EPS具有流动性的双层结构，是由松散附着的外层(LB)和紧密黏附的内层(TB)组成，EPS的主要成分是蛋白质(PN)和多糖(PS)^[22]。ANAMMOX-UASB反应器启动过程中EPS含量及组成见图4。由图4可知，第0~53天，EPS含量快速降低，由初期的34.91 mg·g⁻¹(以VSS计)(0 d)下降为14.48 mg·g⁻¹(53 d)，PN/PS由7.88(0 d)升至11.58(53 d)；EPS中TB/LB由1.19变为1.07。第53~123天，EPS含量略降至14.19 mg·g⁻¹，PN/PS由11.58升至14.25；EPS中TB/LB为6.21。第123~160天，EPS含量逐渐上升至28.02 mg·g⁻¹，PN/PS进一步升至18.59；EPS中TB/LB为4.15。第160~250天，EPS含量继续升至39.21 mg·g⁻¹，PN/PS升至23.20；EPS中TB/LB变为3.12。EPS中PN含量变化大，PS含量变化相对较小，且在启动过程中PN/PS持续上升。启动过程中EPS均以TB-EPS为主；LB-EPS中LB-PN/LB平均值93.8%，TB-EPS中TB-PN/TB平均值为93.1%，各分层EPS中均以PN为主，表明EPS中蛋白质在ANAMMOX-UASB启动过程中起关键作用，这与GUO等^[23]报道的研究结果一致。大量的PN产生可能来源于细胞死亡后的释放、细胞的分泌以及EPS中含有大量胞外酶所致。PN是疏水性基团，PS是亲水性基团，MA等^[24]的研究表明，EPS中PN的含量与污泥的絮凝和沉降能力成正相关，较高的PN含量可以增强微生物聚集体的凝聚性。DONG等^[25]的研究表明，PN中带正电荷的氨基可以中和羧基的负电荷，从而加剧污泥的絮凝。CHEN等^[21]发现，PN/PS越大，污泥的沉降性能越好。在ANAMMOX-UASB启动过程中，PN/PS由启动前的7.88增至23.20，与絮状污泥逐渐颗粒化及其沉降性能逐渐增强的变化趋势一致。

图 4  ANAMMOX-UASB启动过程中的EPS含量及组分变化

Figure 4.  Changes of EPS contents and components during startup process of ANAMMOX-UASB

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2) EPS组分的荧光特性。污泥EPS中含有大量荧光特性的物质，可利用三维荧光分光光度法分析EPS组成特征。启动过程中第0、53、123天的LB-EPS和TB-EPS三维荧光光谱如图5所示。由图5可知，ANAMMOX-UASB在启动过程中共观察到5个荧光峰(A~E)。其中，荧光峰A(220~225 nm/330~340 nm)为芳香族蛋白类物质；荧光峰B(260~275 nm/335~340 nm)为色氨酸蛋白类物质；荧光峰C(270~275 nm/300~305 nm)与酪氨酸蛋白类物质有关；荧光峰D(220 nm/310~320 nm)与简单芳环蛋白类物质有关，荧光峰E(270 nm/425 nm)为富里酸类物质^[26]。

图 5  启动过程中LB-EPS和TB-EPS的三维荧光光谱

Figure 5.  Three-dimensional fluorescence spectra of LB-EPS and TB-EPS during startup

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荧光峰A、B在污泥启动过程的LB-EPS和TB-EPS中均存在，说明在启动过程中的EPS均以蛋白质为主；虽然LB-EPS和TB-EPS所处位置不同，但其组分和结构基本相同。在LB-EPS中仅存在荧光峰A和B，无其他荧光峰，且启动过程中LB-EPS的结构与组成并未发生较大变化。在第53天时TB-EPS中，除存在荧光峰A和B，还出现荧光峰D，说明此阶段有简单芳环蛋白类物质产生；第123天时，出现荧光峰C和E，荧光峰B消失，说明部分色氨酸蛋白类物质转化为酪氨酸蛋白类物质^[27]。三维荧光结果表明，在ANAMMOX-UASB启动过程中污泥EPS中的TB-EPS的结构和组成均会发生变化。

ANAMMOX-UASB启动过程中LB-EPS和TB-EPS中各峰光谱参数见表2。由表2可知，荧光峰会向更长的波长移动(称为红移)，或向更短的波长移动(称为蓝移)。在LB-EPS中，第123天荧光峰A沿Ex方向蓝移5 nm，沿Em方向红移5 nm；荧光峰B沿Ex方向蓝移15 nm，沿Em方向红移5 nm。在TB-EPS中，第53天时荧光峰A沿Em方向红移10 nm，但至第123天时沿Em方向蓝移10 nm，与启动前相同；荧光峰B沿Em方向红移5 nm。上述研究结果表明，波长移动与EPS中各成分的结构变化密切相关，其中波长红移与含羰基取代基、羟基、烷氧基、氨基和羧基含量增加相关联，而波长蓝移则与芳香酯基减少，芳香环数下降，共轭键数的降低和羰基、羟基和氨基的减少直接相关。荧光峰波长及峰强度的变化说明ANAMMOX-UASB启动过程中污泥EPS中的组分、结构均发生变化。

表 2  ANAMMOX-UASB启动过程中LB-EPS和TB-EPS的荧光光谱参数

Table 2.  Fluorescence spectral parameters of LB-EPS and TB-EPS during startup process of ANAMMOX-UASB

样品	时间/d	峰A			峰B			峰C			峰D			峰E
		Ex/Em	强度		Ex/Em	强度		Ex/Em	强度		Ex/Em	强度		Ex/Em	强度
LB	0	225/330	274.5		275/335	175.1		—	—		—	—		—	—
	53	225/330	193.4		275/335	136.2		—	—		—	—		—	—
	123	220/335	51.0		260/340	65.3		—	—		—	—		—	—
TB	0	220/330	176.5		275/335	109.0		—	—		—	—		—	—
	53	220/340	296.4		275/340	210.0		—	—		220/310	260.0		—	—
	123	220/330	47.7		—	—		270/300	48.0		220/310	47.8		270/425	15.3

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2.4   微生物群落

1)微生物多样性和丰富度分析。ANAMMOX-UASB启动过程中的微生物多样性和丰富度如表3所示。由表3可知，所有样品的覆盖率均大于99%。这表明样品数据涵盖的物种充足，微生物群落丰富度和多样性结果具有较高的可靠性和真实性^[28]。ACE和Chao1指数可以表征物种的丰富度，其值越大，所含物种越丰富。Shannon指数常用来评价生物群落组成复杂程度，其值越大，表明群落复杂程度越高^[29]。Simpson指数更倾向于反应群落的均匀性，其值越大，表示优势菌群占总体生物菌群比例越大^[30]。由表3可知，接种污泥的Chao1和ACE指数分别为594.16和583.74，第53天的Chao1和ACE指数分别上升至最大值，为695.08和682.31。这表明此时的群落中所含物种最丰富，结合启动中出水指标可得，此时反硝化菌、氨化菌、厌氧氨氧化菌共存。第250天分别下降到351.00和312.34，表明工艺启动成功后，微生物以自养厌氧氨氧化菌为主，群落丰富度有所下降。接种污泥的Shannon指数为5.19，第53天上升至最大值为6.06，表明此时群落复杂度最大；第250天降低至4.43，其原因是反应器成功启动后，厌氧氨氧化菌的丰度不断升高，其他微生物的丰度逐渐降低，导致微生物群落复杂度有所下降。接种污泥的Simpson指数为0.92，第53天上升至最大值0.96，表明此时反应器内优势菌群所占的比例也最大；第250天下降为0.87，较接种污泥略有降低，表明反应器启动成功后，优势菌群所占的比例有所下降。

表 3  ANAMMOX-UASB启动过程中微生物多样性和丰富度

Table 3.  Microbial diversity and abundance during startup process of ANAMMOX-UASB

时间/d	Chao1	ACE	Shannon	Simpson	覆盖率/%
0	594.16	583.74	5.19	0.92	99.5
53	695.08	682.31	6.06	0.96	99.5
123	343.23	328.19	4.78	0.90	99.8
250	351.00	312.34	4.43	0.87	99.7

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2)微生物门水平物种丰度分析。将微生物在门水平上丰度前10的物种绘制成物种相对丰度柱形累加图(图6)。主要为变形菌门(Proteobacteria)、绿弯菌门(Chloroflexi)、厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、Latescibacteria菌门、Cloacimonetes菌门、浮霉菌门(Planctomycetes)、放线菌门(Actinobacteria)和疣微菌门(Verrucomicrobia)。其中浮霉菌门和变形菌门为脱氮功能菌。变形菌门在各个样品中占最大比例，在启动过程中丰度逐渐上升，由7.22%上升到54.40%。曹雁等^[31]利用上流式厌氧过滤床(upflow blanket filter，UBF)反应器启动厌氧氨氧化工艺，启动成功后变形菌门增加了12%。杨开亮等^[32]利用SBR接种活性污泥启动厌氧氨氧化工艺时，变形菌门在启动过程中丰度逐渐下降。上述研究结果不同，可能与反应器类型、接种污泥类型、运行参数及环境条件等不同有关。沈耀良等^[33]在厌氧折流板(anaerobic baffled reactor，ABR)反应器中发现各隔室中变形菌门为主要菌种，其在脱氮方面占有重要地位。绿弯菌门是厌氧氨氧化系统中常见的伴生菌门，接种污泥的丰度为31.23%，第53天下降为20.32%，第123天反应器启动成功时丰度上升为28.52%。CHEN等^[34]研究发现，绿弯菌门是兼性厌氧菌，在厌氧氨氧化污泥中起到支撑和骨架作用，可作为形成小颗粒污泥的框架粒子，也可作为颗粒污泥的载体，从而有利于厌氧氨氧化颗粒污泥的形成。MIAO等^[35]的研究表明，厚壁菌门对反硝化有重要作用，厚壁菌门丰度由28.27%下降为5.55%，说明ANAMMOX-UASB启动过程中异养反硝化菌因环境条件改变大量裂解死亡。浮霉菌门为主要的自养脱氮功能菌群，厌氧氨氧化菌归属此菌门；接种污泥浮霉菌门丰度仅为0.34%，第123天启动成功时其丰度增至1.89%，表明反应器内富集了一定量的厌氧氨氧化菌。其他研究者也发现，厌氧氨氧化工艺启动过程中变形菌门丰度始终高于浮霉菌门丰度。如朱彤等^[36]发现，在厌氧氨氧化反应器启动成功后，虽然变形菌门丰度有所下降，但仍高于浮霉菌门。

图 6  ANAMMOX-UASB启动过程中微生物门水平组成

Figure 6.  Composition of microorganisms at the phylum level during startup process of ANAMMOX-UASB

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3)微生物属水平物种丰度分析。由于厌氧氨氧化菌属于浮霉菌门，因此，对浮霉菌门进行属水平的分析(图7)。浮霉菌门有unidentified_Phycisphaerae、Candidatus_Anammoximicrobium、Candidatus_Brocadia、Thermogutta、Pirellula和Rhodopirellula。在已知的6种厌氧氨氧化菌属中，启动过程中存在2种厌氧氨氧化菌属，分别为Candidatus Anammoximicrobium和Candidatus Brocadia。接种污泥中Candidatus Anammoximicrobium的丰度为40.94%，第53天下降到30.77%，第123天下降为0。杨瑞丽等^[29]进行厌氧氨氧化工艺启动时，观察到Candidatus Anammoximicrobium丰度随NLR增大而逐渐降低，第172天下降到0，其可能的原因是Candidatus Anammoximicrobium生长速率较慢、亚硝酸盐亲和力较低以及对水质变化的抵抗力较弱。第123天，Candidatus Brocadia是反应器内唯一的厌氧氨氧化菌，其丰度为12.15%，第250天，下降到11.63%。曹雁等^[31]利用UBF反应器培养厌氧氨氧化细菌时，Candidatus Brocadia的丰度由0.01%增加到1.00%。VAN DER STAR等^[37]发现Candidatus Brocadia适合存在于高含氮浓度废水中。本实验中，进水氨氮质量浓度由50 mg·L⁻¹提高到300 mg·L⁻¹，属于高含氮废水，更适合Candidatus Brocadia生长，故Candidatus Brocadia启动过程中可得到有效富集，成为优势菌属。有研究^[38]表明，由于生存环境的不同，厌氧氨氧化菌的群落结构存在差异，在稳定的生长环境中，通常只有1个属种的厌氧氨氧化菌占优势，这与本研究结果类似。

图 7  ANAMMOX-UASB启动过程中浮霉菌门属水平组成

Figure 7.  Composition of microorganisms of Planctomycetes at the genus level during startup process of ANAMMOX-UASB

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3.   结论

1) ANAMMOX-UASB启动过程中絮状污泥逐渐颗粒化，最终以不规则状的红色颗粒污泥和褐色絮状污泥为主。微生物的脱氢酶活性由3 909.51 μg·(h·g)⁻¹持续降至72.13 μg·(h·g)⁻¹。EPS主要以TB-EPS为主，占比为75.7%；且LB-EPS和TB-EPS中PN占比稳步增大，分别增至99.6%和94.7%，PN在厌氧氨氧化工艺启动过程中起关键作用。

2)在ANAMMOX-UASB启动过程中，Chao1、ACE、Shannon和Simpson指数均呈现先升后降的趋势，启动过程中污泥的优势菌门为变形菌门(Proteobacteria)、绿弯菌门(Chloroflexi)、厚壁菌门(Firmicutes)、拟杆菌门(Bacteroidetes)、浮霉菌门(Planctomycetes)。浮霉菌门中Candidatus Anammoximicrobium丰度逐渐降低直至消失，而Candidatus Brocadia丰度最终增至12.15%。